计数板是一个特制的可在显微镜下观察的玻片

血细胞计数的误差分别来源于技术误差和固有误差.其中由于操作人员采血不顺利,器材处理、使用不当,稀释不准确,细胞识别错误等因素所造成的误差属技术误差；而由于仪器（计数板、盖片、吸管等）不够准确与精密带来的误差称仪器误差,由于细胞分布不均匀等因素带来的细胞计数误差属于分布误差或计数域误差（filed error）.仪器误差和分布误差统称为固有误差或系统误差.技术误差和仪器误差可通过规范操作、提高熟练程度和校正仪器而避免或纠正,但细胞分布误差却难于彻底消除.因此,搞好红细胞计数的质量控制一般需采用以下措施.
1．避免技术误差,纠正仪器误差
（1）所用器材均应清洁干燥,计数板、血盖片、微量吸管及刻度吸管的规格应符合要求或经过校正.①计数板的鉴定：要求计数室的台面光滑、透明,划线清晰,计数室划线面积准确.必要时采用严格校正的目镜测微计测量计数室的边长与底面积,用微米千分尺测量计数室的深度.美国国家标准局（NBS）规定每个大方格边长的误差应小于1%,即1±0.01mm,深度误差应小于2%,即0.1±0.002mm.若超过上述标准,应弃之不用.②血盖片应具有一定的重量,平整、光滑、无裂痕,厚薄均匀一致,可使用卡尺多点测量（至少在9个点）,不均匀度在0.002mm之内.必要时采用平面平行仪进行测量与评价,要求呈现密集平行的直线干涉条纹.最简单的评价方法是将洁净的盖片紧贴于干燥的平面玻璃上,若能吸附一定的时间不脱落,落下时呈弧线形旋转,表示盖片平整、厚薄均匀.同时,合格的盖片放置在计数室表面后,与支持柱紧密接触的部位可见到彩虹.精选出的盖片与其他盖片紧密重合后,在掠射光线下观察,如见到完整平行的彩虹条纹表示另一枚盖片质量也符合要求.③目前临床实验室多采用一次性微量采血管采集毛细血管血,除注意定点购买使用信誉较好厂家的产品外,还应对每一批量的采血管进行抽样检查,可通过水银称重法或有色溶液比色法进行校正,误差不应超过±1%.
（2）红细胞稀释液应等渗、新鲜、无杂质微粒.
（3）严格操作,从消毒、采血、稀释、充池到计数都应规范,尤其应注意的是血样稀释及充池时既要作到充分混匀,又要防止剧烈震荡为破坏红细胞.必须一次性充满计数室,防止产生气泡,充入细胞悬液的量以不超过计数室台面与血盖片之间的矩形边缘为宜.
（4）报告法定计量单位.
2．缩小计数域误差或分布误差 由于血细胞在充入计数室后呈随机分布或称Poisson分布（ ）,而我们所能计数的细胞分布范围是有限的,由此造成的计数误差称为计数域误差或分布误差.缩小这种误差的有效方法就是尽量扩大细胞计数范围和计数数目,一般先进行误差估计,然后决定所需计数的数目和计数范围,只要能将误差控制在允许范围内即可.Berkson指出,当使用同一支吸管、同一面计数室,计数0.2mm2面积的细胞数,有望将 CV控制在可接受的7%以内.对于红细胞计数而言,由于红细胞数量较多,在计数室中显得比较“拥挤”,根据Poisson公式（ ）推断,.欲将误差控制在变异百分数5%以内,至少需要在计数室中计数400个红细胞,因此要求计数五个中方格的红细胞.事实上Berkson还通过实验证明,红细胞的计数域误差为s=0.92 ,较理论误差（Poisson分布误差）要小.
3．排除异常标本的干扰 白细胞数量在正常范围时,相对于红细胞数量来讲,其影响可忽略,但如白细胞过高（>100×109/L）,则应对计数结果进行校正.方法是：①实际RBC=计得RBC-WBC.如当红细胞换算后为3.5×1012/L、白细胞换算后为100×109/L时,病人实际红细胞数应为3.4×1012/L.②在高倍镜下计数时,避开有核细胞.有核细胞体积比正常红细胞大,中央无凹陷,无草黄色折光,可隐约见到细胞核.此外,当病人急性严重贫血时网织红细胞可提前大量释放,也给红细胞计数带来一定的干扰,而且影响网织红细胞绝对值计算结果.其校正方法有待探讨.

先五点取样,再按公式,将立方微米换算成立方厘米,毫升.计数板有两格式,公式也有两计算方法,购买计数板时说明书上都有公式计算方法,按买的格式计算就可以了.多给点分哈.

这是因为研究过程中这种方法比较方便,而且只要大家采用统一的标准,即便不是反映了真实的活菌数目,但是其生长趋势还是可以反映的,毕竟,死细菌曾经也是活着的.

自己查一下每一个中方格的边长（应该是正方形）.给你说一下牛鲍计数板的技术原理你可以自己推一下,牛鲍计数板细胞计数时,边角有4个大方格,每个大方格为边长1mm的正方形,盖玻片与计数板之间有0.1mm的空间,因此一个大方格体积为1mm*1mm*0.1mm=0.1mm（立方毫米）=0.1ul.所以我们在计数的时候,计数4个大方格的细胞总数,然后除以4,即可得到一个大方格的细胞数a,
a*10*1000即每毫升培养液中的细胞数.

你要轻点吹匀,另外计数时候边晃动边吸悬液,你不能让管子静止,细胞就沉下来了

250000
90个小室有45个酵母菌,平均每个小室0.5个,500个小室就是250个.也就是说0.1ml里有250个酵母菌.
这0.1ml试液的浓度和100ml试液（99+1配出来的）的一样,100ml试液里的总数和1ml酵母菌样品里的相等,根据浓度相等列等式250/0.1=x/100 x=250000

（1）300000 重复实验
（2）偏小 细胞过密有所重叠

hhh

http://liushuai3000.blog.hexun.com/8593453_d.html

1 视待测菌悬液浓度,加无菌水适当稀释（斜面一般稀释100倍）,以每小格的菌数可数为度.2 取洁净的血球计数板一块,在计数区上盖上一块盖玻片.3 将菌悬液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下...

先算出中格的体积,然后用N除以中格的体积,算出密度.
计算时,注意单位的换算,中格的体积单位应该是立方毫米,而酵母菌培养液的单位是毫升.

“大格边长为1毫米”好像有点问题.你再仔细审题,我子给你提供个思路.具体的自己计算吧.
希望能对你有所帮助,个人观点,仅供参考.