southern杂交某真菌中发现两个肌动蛋白.通过实验继续对W.washdit研究A .首先用与肌动蛋白基因高度保守序列

预杂交是为了减少探针的非特异性结合.因为在杂交膜上,有的位置结合了待测DNA,但有的位置是没有结合任何DNA的.进行杂交时,带标记的探针有可能与膜非特异性结合,造成假阳性.如果在杂交前用与探针没有互补配对序列的鱼精DNA占据了膜上那些空的位置,杂交时,探针就不能与膜非特异性结合了；当然,由于鱼精DNA与探针没有互补配对序列,探针也不能与鱼精DNA结合.

Southern杂交是检测DNA的,不怕细菌的哦,所以试剂不需要灭菌!
【原理】
Southern杂交是分子生物学的经典实验方法.其基本原理是将待检测的DNA样品固定在固相载体上,与标记的核酸探针进行杂交,在与探针有同源序列的固相DNA的位置上显示出杂交信号.通过Southern杂交可以判断被检测的DNA样品中是否有与探针同源的片段以及该片段的长度.
一．基因组DNA的限制酶切
【操作】
DNA (1μg/ml)20μg、10×酶切buffer5.0μl、限制性内切酶(lOU/μl) 5.0μl、加ddH2O至50μl,在最适温度下消化1～3h.消化结束时可取5μl电泳检测消化效果.如果消化效果不好,可以延长消化时间,但超过6h己没有必要.或者放大反应体积,或者补充酶再消化.如仍不能奏效,可能的原因是DNA样品中有太多的杂质,或酶的活力下降.消化后的DNA加入1/10体积的0.5mol/L EDTA,以终止消化.然后用等体积酚抽提、等体积氯仿抽提,2.5倍体积乙醇沉淀,少量TE溶解(参见DNA提取方法,但离心转速要提高到12000g,以防止小片段DNA的丢失).如果需要两种酶消化DNA,而两种酶的反应条件可以一致,则两种酶可同时进行消化；如果反应条件不一致,则先用需要低离子强度的酶消化,然后补加盐类等物质调高反应体系的离子强度,再加第二种酶进行消化.
二．基因组DNA消化产物的琼脂糖凝胶电泳
【操作】
1.制备0.8%凝胶一般用于Southern杂交的电泳胶取0.8%.
2.电泳电泳样品中加人6×Loading缓冲液,混匀后上样,留一或两泳道加DNAMarker.2V/cm,DNA从负极泳向正极.电泳至溴酚蓝指示剂接近凝胶另一端时,停止电泳.取出凝胶,紫外灯下观察电泳效果.在胶的一边放置一把刻度尺,拍摄照片.正常电泳图谱呈现一连续的涂抹带,照片摄人刻度尺是为了以后判断信号带的位置,以确定被杂交的DNA长度.
三．DNA从琼脂糖凝胶转移到固相支持物
【操作】
1.碱变性 室温下将凝胶浸入数倍体积的变性液中30min.
2.中和 将凝胶转移到中和液15min.
3.转移 按凝胶的大小剪裁NC膜或尼龙膜并剪去一角作为标记,水浸湿后,浸入转移液中5min.剪一张比膜稍宽的长条Whatman 3mm滤纸作为盐桥,再按凝胶的尺寸剪3～5张滤纸和大量的纸巾备用.按图8-9所示进行转移.(转移过程一般需要8～24h,每隔数小时换掉已经湿掉的纸巾.转移液用20×SSC.注意在膜与胶之间不能有气泡.整个操作过程中要防止膜上沾染其他污物.)
4.转移结束后取出NC膜,浸入6×SSC溶液数分钟,洗去膜上沾染的凝胶颗粒,置于两张滤纸之间,80℃烘2h,然后将NC膜夹在两层滤纸间,保存于干燥处.
四.探针标记
【操作】
（随机引物试剂盒提供的标记步骤）
1.取25～5Ong模板DNA于0.5ml离心管中,100℃变性5min,立即置冰浴.
2.在另一个0.5时离心管中加入:Labeling5×buffer 10μl(含有随机引物),dNTPmix2μl(含dCTP、 dGTP、dTTP各0.5mmol/L),BSA(小牛血清白蛋白)2ul,[α-32p]dATP 3μl,Klenow 酶 5U.
3.将变性模板DNA加入到上管中,加双蒸水至50μl,混匀.室温或37℃1h.
4.加50μl终止缓冲液终止反应.标记后的探针可以直接使用或过柱纯化后使用.由于α-32P的半衰期只有14天,以标记好的探针应尽快使用.探针的比活性最好大于109计数/分/μl.
五．杂交
【操作】
1.预杂交 NC膜浸入2×SSC液中5min,在杂交瓶中加入杂交液(8cm×8cm的膜加5ml即可),根膜的背面贴紧杂交瓶壁,正面朝向杂交液.放入42℃杂交炉中,使杂交体系升到42℃.取经超声粉碎的鲑鱼精DNA (已溶解在水或TE中)100℃加热变性5min,迅速加到杂交瓶中,使其浓度达到100ug/ml.杂交4h.鲑鱼精DNA的作用是封闭NC膜上没有DNA转移的位点,降低杂交背景、提高杂交特异性.
2．杂交 倒出预杂交的杂交液,换上等量新的已升温至42℃的杂交液,同样加入变性的鲑鱼精DNA.将探针100℃加热5min,使其变性,迅速加到杂交瓶中.42℃杂交过夜.
六．洗膜与检测
【操作】
取出NC膜,在2×SSC溶液中漂洗5min,然后按照下列条件洗膜
2× SSC/0.1% SDS,42℃,l0min
1× SSC/0.1% SDS,42℃,l0min
0.5×SSC/0.1% SDS,42℃,10min
0.2×SSC/0.1% SDS,56℃,10min
0.1×SSC/0.1% SDS,56℃,10min
在洗膜的过程中,不断振摇,不断用放射性检测仪探测膜上的放射强度.实践证明,当放射强度指示数值较环境背景高1～2倍时,是洗膜的终止点.上述洗膜过程无论在哪一步达到终点,都必须停止洗膜.洗完的膜浸入2×SSC液中2min,取出膜,用滤纸吸干膜表面的水分,并用保鲜膜包裹,注意保鲜膜与NC膜之间不能有气泡.将膜正面向上,放入暗盒中(加双侧增感屏),在暗室的红光下,贴覆两张X线片,每一片都用透明胶带固定,合上暗盒,置-70℃低温冰箱中曝光.根据信号强弱决定曝光时间,一般在1-3天时间.洗片时,先洗一张X线片,若感光偏弱,则再多加两天曝光时间,再洗第二张片子.影响Southern杂交实验的因素很多,主要有:DNA纯度、酶切效率、电泳分离效果转移效率、探针比活性和洗膜终止点等.

Southern 的结果最后是体现在胶片,或者是膜上,能看到深浅不一的条带,但是这种条带如果进行胶片曝光的话,很容易过曝,也就是条带的深浅并不能精确反应具体的拷贝数.所以只能选择拷贝数已知的样品作为对照,根据最后的条带灰度判断有可能的拷贝数,但是这个数量并不精确.
荧光定量PCR,如果能够找到拷贝数已知的样品,用此样品做标准曲线,就可以相应计算出,样品中具体的拷贝数,准确度要高很多,相应实验操作也要比southern简单得多,就是要控制好实验的重复性.

所用于分析的对象不同.
Northern杂交用于分析RNA；
Southern杂交用于分析DNA；
Western杂交用于分析蛋白质.
大致过程如下：
(1) 酶切DNA, 凝胶电泳分离各酶切片段,然后使DNA原位变性.
(2) 将DNA片段转移到固体支持物(硝酸纤维素滤膜或尼龙膜)上.
(3) 预杂交滤膜,掩盖滤膜上非特异性位点.
(4) 让探针与同源DNA片段杂交,然后漂洗除去非特异性结合的探针.
(5) 通过显影检查目的DNA所在的位置.

原理都是一样的.1、基于DNA双链的解链和重新配对；2、 杂交探针的标记和显示技术

封闭剂与背景结合,抗体与底物结合
如果不用封闭剂与背景结合,抗体就会与背景结合,然后呢,背景就是花花绿绿的荧光,不就观察不到结果了嘛~