标准曲线中R的平方是什么意思

标准曲线线性是有范围的,浓度过大,溶液已不是真溶液,有色物质发生聚合、缔合等,其对光的折射、反射加强,这种吸收已不满足郎伯比尔定律的要求,标准曲线就发生弯曲.
你说的“某些物质在1mg/L是线性的,那么在1g/L是吗”问题,不好回答,必须通过实验来说明.

因为是对照实验,所以要遵循平行对照,单一变量原则,其他均保持不变.活力测定是需要加0.1ml血清,所以标准曲线加0.1ml磷酸缓冲液,相当于其他实验水的作用.

具体情况要看你做的这个基因在两个物种中的同源性.如果同源性很高,可以用同一对引物,同一条探针的话,那我们就认为它在realtimePCR中的扩增效率是一样的,标准曲线只要做一次就行了,对数据分析不会有影响

紫外-可见分光光度计是元析仪器引用新型技术,其功能强大,采用单色器技术,波长范围190-1100nm,是各种涉及水和废水分析领域的通用仪器,应用范围包括市政和工业废水,饮用水,加工过程用水,地表水,冷却水和锅炉补给水等.
分子的紫外可见吸收光谱是由于分子中的某些基团吸收了紫外可见辐射光后,发生了电子能级跃迁而产生的吸收光谱.由于各种物质具有各自不同的分子、原子和不同的分子空间结构,其吸收光能量的情况也就不会相同,因此,每种物质就有其特有的、固定的吸收光谱曲线,可根据吸收光谱上的某些特征波长处的吸光度的高低判别或测定该物质的含量,这就是分光光度定性和定量分析的基础.
分光光度分析就是根据物质的吸收光谱研究物质的成分、结构和物质间相互作用的有效手段.它是带状光谱,反映了分子中某些基团的信息.可以用标准光图谱再结合其它手段进行定性分析.
根据Lambert-Beer定律说明光的吸收与吸收层厚度成正比,比耳定律说明光的吸收与溶液浓度成正比；如果同时考虑吸收层厚度和溶液浓度对光吸收率的影响,即得朗伯-比耳定律.即A=εbc,(A为吸光度,ε为摩尔吸光系数,b为液池厚度,c为溶液浓度)就可以对溶液进行定量分析.
将分析样品和标准样品以相同浓度配制在同一溶剂中,在同一条件下分别测定紫外可见吸收光谱.若两者是同一物质,则两者的光谱图应完全一致.如果没有标样,也可以和现成的标准谱图对照进行比较.这种方法要求仪器准确,精密度高,且测定条件要相同.
实验证明,不同的极性溶剂产生氢键的强度也不同,这可以利用紫外光谱来判断化合物在不同溶剂中氢键强度,以确定选择哪一种溶剂.

铜及其化合物,用的是微孔滤膜,不消解你怎么提取铜元素.
不是为了消除滤膜污染误差.
空白还是要做,也要扣除

烟叶首先需要在烘箱中干燥（105度）2h.取出后剪碎（越细越好）.称取一定量的样品（根据样品中的Pb含量来确定称样量,含量高的称少一点,含量低的称多一点）在烧杯中.加入少量的去离子水湿润.加入硝酸10ml左右,低温加热,一段时间以后升高温度,注意不要沸腾.等待烟叶消解的差不多了,取下冷却一段时间,加入2ml的H2O2.加热沸腾,取下冷却后定容.
标准曲线就是自己配置不同浓度的标液然后测,拉出标准曲线就可以了.这个基本上所有的分析书上都有的.自己查

吸光度与浓度在一般情况下,换算公式是直线方程,c=ka+b,遵守lambert-beer定律.
但你必须先做一系列不同浓度的标准溶液,测出荧光.按照浓度和荧光的关系做出工作曲线,看是否为直线.还可以求出它们的线性范围,也就是方法的上、下限.超过线性范围之外就不能用了.

标准曲线法的优点是：绘制好标准工作曲线后测定工作就变得相当简单,可直接从标准工作曲线上读出含量,因此特别适合于大量样品的分析.
标准曲线法的缺点是：每次样品分析的色谱条件（检测器的响应性能,柱温,流动相流速及组成,进样量,柱效等）很难完全相同,因此容易出现较大误差.此外,标准工作曲线绘制时,一般使用欲测组分的标准样品（或已知准确含量的样品）,而实际样品的组成却千差万别,因此必将给测量带来一定的误差.
另外个人观点：标准曲线的测定和绘制是很麻烦的事情,需要配制各浓度的标准溶液并准确测定,而相比之下,标准加入法以及内标法就方便得多.当然,这两种方法也有他们各自的缺点= =

你的问题比较专业了,我也不知道是不是回答正确.
不过根据经验,一般来说,红外的重复性不是很好,也就是说,同样的化合物,两次的测量结果可能会有一定的出入,因此,你说的标准曲线是不是空白呢?也就是说,正常的水样的图谱,将正常的水样的图谱做几次,或者是根据图谱的特征峰高度或者面积进行转换,绘制成图谱,可能这就是你说的校正系数吧.

可能你的标准品浓度设置的范围太大了,以至于超过酶标仪的最佳测量范围,我们实验室要求做ELISA实验时标准品的OD值控制在0.10,9左右,在这个范围内拟合度做好,可达到三个9,还用另外的原因如试剂盒一抗包被的质量、标准品稀释时是否混匀等细节问题!
祝实验顺利!

怎样才是精确的?
1.OD值在一定范围内是比较精确的,范围我忘了.
标准液在范围内作出的标准曲线才是比较精确.
2.如果待测样品的OD值在标准曲线大概中间的位置,可认为是相对标准的.
在边上甚至在曲线外（标准曲线外推得到）相对误差就比较大.
浓度过大或过小会使误差增大.

该怎么做就怎么配么,是乙醇相的还是其它什么相的；不要做曲线,既麻烦误差又大不说,还浪费标准样品和时间.配两个标准样品溶液就可以了,并估计能把样品涵盖其中.比如说样品含量约在0.05%,则标准样品可以选择在0.01%-0.1%.

你指的是牛血清白蛋白吧?
一般粉末都放在4度保存,如果你的是溶液的话,短期放在-20是没有问题的,如果还是想长期保存,则应该放在-70.
你的实验室什么?蛋白质浓度定量吗?
如果是的话,蛋白降解的影响应该不大.你考虑过你的检测试剂保存是否得当,或者是反应的时间和温度是否足够呢?

这个原因很难说,有可能是你的样品的浓度,如果很低的话说明最低检测限到了,所以稀释不稀释结果一样,跟方法也有关系,不知道是竞争法还是夹心法的,可能也跟荧光集团有关系

用标准加入法,必过原点.
酸和水混合后,最好多静置一会,要不测出来的数值会不稳定.

首先,看看空白对照是不是也有Ct值,这种情况可能是样品污染,或者是你用的各种试剂有污染.如果你们实验室做这个基因做的很多的话,污染的可能性是很大的.最好换个地方做,而且是要在超净工作台上.避免所有的可污染的状况.
如果不是污染的话,那么样品的浓度也许可能还是高,造成最后负10倍稀释的样品DNA的浓度还是较高,所以看不出Ct值的变化.选择合适的稀释梯度也是比较重要的.

不过原点是很正常的实验结果呀
如果你一定要过原点,那么做线性回归的时候把常数强制设为0,对斜率进行回归.

E是科学计数法,E+08表示10的八次方

一年多没碰化学了，以下几点可以确定：
1、这个五个浓度梯度是需要你判断的，不过尽量确保你所测的溶液浓度在这个浓度区间内，
3、绘制出来的是吸光度-浓度曲线，这是一条直线，
4、吸光度和浓度成正比，至于体积，好像没有太大关系...

因为你配制的溶液都是ppm 级的,最好取一个可以方便称量的质量配成溶液,再逐步稀释.如：用滴管吸取100mg（还要除以其包装说明上写的百分含量才能得到准确结果）的苯乙烯,定容到10ml(一般用乙醇作溶剂),这就得到10,000 ppm的苯乙烯溶液,再用乙醇稀释到你所需要的1ppm,2ppm,10 ppm 即可.

答：
【】A-A0 = 0.558 -0.093 = 0.465
【】代入标准曲线：Y=（A-A0） 0.465 =0.0883X-0.0052
【】求得 X = 5.322 (ug）
【】氨氮 含量 C = 5.322 (ug）/2.5ml = 2.13 (mg/L）

那是空白对照.