免疫组化

这个其实是一只正常的症状表现。

免疫组化是利用抗原与抗体间的特异结合原理和特殊的标记技术，对组织和细胞内的特定抗原、抗体进行定位、定性、定量的一们技术。我们都是先进行免疫组化，在DAB染色后进行HE染色。既能看到免疫组化的结果，又能看到细胞的形态，CD34+免疫组化染色后是棕色的颗粒，效果很好。1）做免疫组化的片子最好不要同时做HE染色，因为那样会掩盖阳性着色的结果；而且用苏木素复染细胞核也是淡染，若要在免疫组化的片子上观察形态学的改变，除非有非常典型的表现，一般是有很大的难度的。2）你是培养的细胞做免疫组化吗？如果是的话，那就每个样本只有一张片子吧？唯一的办法是进行免疫双染，同时做CD34和AFP（甲胎蛋白）。我觉得后者阳性便可以或多或少的获得向肝细胞分化的证据。3）用HE染色来识别造血干细胞向肝细胞分化，也就是说要看到肝细胞的典型形态学改变后才可以下结论。问题是：早期的肝细胞仅凭形细胞态学观察并不能很容易的被识别。病理大夫看组织切片，重要的是看其组织学结构，对肝细胞也是这样。如果单拿出来一个细胞，还是培养的细胞，染色后真的不容易区分。所以我觉得你设计的用HE染色来确定早期细胞向哪个方向分化不是很有说服力。4）如果是切片，也就是说每个样本可以有多张切片，那可以在连续切片上分别染CD34和AFP，拍照时选择相同视野，也有一定说服力。但是还是不如双染法更可靠。5）用双染最大的问题在于：这两者都表达在胞浆中，染色容易相互覆盖。所以在双染的方法选择上你还要再考虑一下，可不可以用免疫荧光双染？这样也很有说服力的

多重荧光免疫组化染色是基于抗原、抗体特异性结合的原理，选用辣根过氧化物酶（HRP）标记的二抗抗体，对试剂盒中的荧光染料进行活化，将信号共价结合到抗原上，我们用的是absin品牌有多色荧光免疫组化染色试剂盒

免疫组化结果不能脱离组织学切片单独判断，单独看免疫组化没有什么意义，从图片提供的信息来看，目前诊断结果考虑是成年型粒层细胞瘤（也有人叫成年性颗粒细胞瘤）。成年型粒层细胞瘤是一种低度恶性的性索-间质肿瘤（一般发生在卵巢），分为两种类型：成年型和幼年型。成年型粒层细胞瘤大约占所有卵巢肿瘤的1%。是最常见的性索间质肿瘤。免疫组织化学染色可以帮助诊断该肿瘤，一般该肿瘤FOXL2、α-inhibin和calretinin染色阳性，EMA阴性。其他常用阳性包括CD56、WT1、SF-1、SMA、S100和CD99（膜显色）。ER/PR通常阳性，PR染色比ER强，部分肿瘤也可呈ER/PR阴性。该报告中的诊断结果提示需要进一步明确，可以遵建议处理，肿瘤患者明确诊断很重要。

脱蜡和水化的目的和原理不一样，但都是利用酒精既溶于水又溶于有机溶剂的特性。组织脱水的目的是通过酒精的媒介让有机溶剂渗透入组织，再让石蜡置换有机溶剂，从而使组织包埋在石蜡中。而水化是组织切片经二甲苯脱蜡后，用酒精洗去二甲苯，所以必须从高浓度酒精开始，让后再利用酒精的媒介入水。不知说明白没？

KI-67/MIB-1是细胞增殖相关抗原，以上强阳性的情况，提示肿瘤细胞增殖活跃，恶性程度较高，预后较差。

免疫组化中，所染色的蛋白的位置与该蛋白的特性有关系。在现有所研究的蛋白中，不少蛋白存在核转位的情况， 也就是说当细胞培养的环境或者刺激的因素不同，该蛋白会出现从胞浆到细胞核的表达位置的改变。有时候表达不变仅仅是从胞浆转位到细胞核，有时候还伴有表达的上调，比如nf-kb。第一批用于细胞生物学的荧光蛋白包括藻胆蛋白（phycobiliproteins）和从蓝藻（cyanobacteria）中提取的触角光合色素（photosynthetic antenna pigments）。这些生物大分子都含有多种胆汁三烯生色基团（bilin chromophores）。

免疫组化是利用抗原与抗体间的特异结合原理和特殊的标记技术，对组织和细胞内的特定抗原、抗体进行定位、定性、定量的一们技术。我们都是先进行免疫组化，在DAB染色后进行HE染色。既能看到免疫组化的结果，又能看到细胞的形态，CD34+免疫组化染色后是棕色的颗粒，效果很好。 1）做免疫组化的片子最好不要同时做HE染色，因为那样会掩盖阳性着色的结果；而且用苏木素复染细胞核也是淡染，若要在免疫组化的片子上观察形态学的改变，除非有非常典型的表现，一般是有很大的难度的。 2）你是培养的细胞做免疫组化吗？如果是的话，那就每个样本只有一张片子吧？唯一的办法是进行免疫双染，同时做CD34和AFP（甲胎蛋白）。我觉得后者阳性便可以或多或少的获得向肝细胞分化的证据。 3）用HE染色来识别造血干细胞向肝细胞分化，也就是说要看到肝细胞的典型形态学改变后才可以下结论。问题是：早期的肝细胞仅凭形细胞态学观察并不能很容易的被识别。病理大夫看组织切片，重要的是看其组织学结构，对肝细胞也是这样。如果单拿出来一个细胞，还是培养的细胞，染色后真的不容易区分。所以我觉得你设计的用HE染色来确定早期细胞向哪个方向分化不是很有说服力。 4）如果是切片，也就是说每个样本可以有多张切片，那可以在连续切片上分别染CD34和AFP，拍照时选择相同视野，也有一定说服力。但是还是不如双染法更可靠。 5）用双染最大的问题在于：这两者都表达在胞浆中，染色容易相互覆盖。所以在双染的方法选择上你还要再考虑一下，可不可以用免疫荧光双染？这样也很有说服力的

我院中医肿瘤科专家研制的中药扶正抗癌排毒疗法（中药扶正肺癌消瘤汤，祛癌丸内服，外贴瘤痛康贴），药力直达肺部癌瘤病灶处快速杀灭癌细胞，彻底铲除病灶。消积水，快速止痛，清热解毒，消肿，排癌毒素，活血化瘀，软化肿瘤之功效。疗效确切，无毒副作用，康复后不易复发。对正在化疗或放疗的癌症患者达到减毒增效的治疗效果，还能缓解化疗、放疗的毒副作用（恶心、呕吐、食欲减退、发热、脱发、白细胞减少等）。一般病情用药七到十天，恶心呕吐缓解，食欲增加，发热下降。用药一个疗程病人精神好转，自觉症状（干咳、咳血、胸闷，胸痛、气急、胸水、呼吸困难等）得到缓解，脱发控制或长有新发，提高白细胞计数，提高机体免疫功能，增强患者的抗癌能力。对手术后癌症患者，应用我院肿瘤专家研制的抗癌系列药物，预防复发、扩散和再转移。

desmin英["desmu026an]美["desmu026an]n.肌间线蛋白网络结蛋白形近词：dismincosmingeosmin数据合作方：金山词霸双语例句百度知道1Objective To study the effect of implantation of bone cells to infarcted myocardium on the expression of myocardial desmin.目的探讨骨髓细胞梗死心肌移植对心肌细胞结蛋白表达的影响。

免疫组化Ki一67(十20%)神经内分泌癌是几期能不能治愈

cea+，腺癌。ck20-，鳞癌、乳腺癌、肺癌、子宫内膜和卵巢非黏液性肿瘤常阴性。ck7+，卵巢、肺和乳腺上皮常阳性。p53+1%，阳性率越高，预后约差。ki-67+8%，阳性率越高，恶性程度越高。cdx-2+，胃肠道腺癌。ck19+，腺癌。应该是低度恶性的腺癌。来源于胃肠道。

免疫组化主要用于预后评估及药物治疗指导意义

正确答案:C解析：抗体的质量是免疫组织化学技术成功的关键，同时也是必备试剂。使用前应了解第一抗体和第二抗体的特异性和敏感性；通过预试验决定抗体的最佳稀释度；在已知阳性和阴性的标本上观察实验结果的符合情况。

I、为达到免疫组织化学技术的要求，组织固定越新鲜越好。在免疫组化最后结果的判断时，常可见到均匀一片的似非特异性染色的现象，经多方研究认为，它是一种假性非特异性的染色。因为肿瘤组织中含有的抗原较易发生扩散弥散，肿瘤细胞无限制的生长和生长过速，导致肿瘤中间部分组织血液供给困难，造成缺血坏死，坏死细胞中的抗原由于机体的作用，可以被均匀地散布于细胞与细胞间的间质，这是抗原发生弥散的一种方式。另一种抗原弥散的方式就是，由于组织没有及时的固定所引起的。离体的组织不及时固定，组织就会自溶，抗原就会扩散，这是一非常普通的常识，但要做好却是极不容易。标本从外科切除到浸入固定液需要经过一段时间，在这段时间里，有的抗原就可以发生扩散。虽然已浸入了固定液，但标本较大，固定液的量又不足，当然由于固定液的渗透需要时间，当渗入到组织之中时，中间的细胞已发生了变化，抗原也随着发生扩散，这种现象在产酶多的器官是比较明显的，如胃癌，当切除后标本较大，虽然在手术室期间已放入了固定液，但固定液要透过肌层达到胃粘膜面起码需要几个小时的时间，当固定液发挥作用时，组织已经发生变化。因此，这了达到免疫组织化学染色的要求，对于离体的组织尽量快的进行固定，有条件的应将其剖开，早取材，早固定。II、组织脱水必须彻底干净组织块取材不能太大过厚，才能较好地完成脱水的过程。如果取材太厚，在较短的时间内脱水不完全，将可引起一系列的问题，比如浸蜡不彻底，切片不好完成，切不完整。由于先天不足，导致后来切片染色的脱落，造成染色的失败，或者由此反复操作，造成人力物力的浪费，造成病理报告的延期发出等。因此，对取材的要求是除了要求要有艺术性外，即平整、外观好看，还要求适中。III、切片必须完整、均匀、平展、无邹折、应用于免疫组织化学染色的切片，对切片的质量要求较高，切片必须完整，平展、无汽泡，无邹折，这样有利在染色时的冲洗，有利于切片的牢固附贴。如果切片不平展，免疫组化染色后，可出现染色不均匀的现象，颜色深浅不一，　不平。如果切片有汽泡切片在烘烤时，由于汽泡的破裂影响了汽泡周围的组织，在其周围可观察到深浅不一的染色。如果切片有邹折，免疫组化染色后，在邹折的地方有深浅不一的颜色，这是一种假阳性，容易引起混淆。IV、切片的附贴必须牢固，必须使用合适的粘贴剂。免疫组织化学染色前的前期准备工作，就是必须对新的载玻片进行处理，新的载玻片表面看起来很干净，有人认为不需要进行任何的处理，都能够适合使用，这是一种错误的想法。新出厂的载玻片，表面复盖着开一层油脂样的物质，如果不加以处理，对切片的附贴是极为不利的。我们的做法是：新的载玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小时甚至过夜，然后取出，经自来水彻底冲洗后，浸入酒精中达2小时以上，取出擦干备用或烘干也可。然后再将载玻片浸入了－氨基－三乙氧基－硅烷（3－Aminopropyltriethoxy-silane）的稀释液（1：50用丙酮或无水乙醇稀释都可以）中硅化10分钟，后经无水乙醇洗2次，烘干即可使用。V、切片必须烘烤附贴牢固，既要经得起抗原修复时高温的作用而不使轻易脱片，又不至于破坏抗原。应用于免疫组化染色的切片。由于整个过程需经几个阶段的处理，如抗原修复时抗原修复液的沸腾且需持续十几分钟，PBS的反复冲洗，有的甚至于4℃冰箱中孵育达十几小时。因此，对切片的质量要求很高，尤其是切片的附贴程度。以往有人主张切片在60℃以下烘烤30-60分钟即可按此进行结果是切片掉片严重，切片松动率占100%。切片究竟烘烤多长时间才合适，既不脱片和适合各项要求，又不至于破坏抗原。几组实验[]诊断P173认为，切片在60℃的恒温干燥箱中烘烤2-5小时最为合适。这是因为：抗原可耐受如此的温度，病理科一般使用的石蜡，其熔点在60℃左右，组织浸蜡时，浸蜡箱中的温度，一般都调在65℃左右，组织在这样温度中要浸泡2小时以上，才能达到彻底地浸蜡。组织中的抗原已经受了65℃的温度考验，保存下来的抗原，都已具有耐热性。另外，经上述时间烘烤出来的切片，附贴牢固，抗原保存好，染色成功率达100%，保证了病理诊断的及时性和准确性。特需要注意的是，不管是应用于诊断的切片还是研究用的切片，烘烤后应尽快进行染色。如果切片切完后，迟迟不进行染色，存放于室温中或工作冰箱中，切片中的抗原将会随着时间的延长而逐渐消失，甚至出现假阴性。原则上是新鲜切片，即行染色，染多少张切多少张，这样才能尽可能的保存表达的抗原。VI、切片脱蜡必须干净，否则将会影响免疫组化染色的最后结果。蜡不溶于水，不与其它的临床使用的抗体相融合。它只能靠特用的试剂，处理足够的时间，才能将其除去。如果脱蜡不干净，少许蜡存留于切片上，将会引起许多弊病，如染色不均匀，阳性物时隐时现，真假难辨，背景染色增加等。为了解决上述的问题，切片在染色前必须彻底脱蜡，目前用于脱蜡的试剂主要是二甲苯，因它脱蜡力强，脱蜡时间较短。较受使用者的青睐。脱蜡的时间要根据季节，室温和试剂的新鲜程度采用不同脱蜡时间。如果在夏天，室温较高，脱蜡试剂也新鲜，则脱蜡时间不需很多，3-5分钟就已足够。如果在冬天，室温较低，脱蜡试剂也较陈旧，则脱蜡时间需要延长，10-20分钟或更长。总之，操作时应根据不同的季节，不同的室温，不同的试剂来决定脱蜡的时间，原则上是要彻底，干净，完全地脱去切片上的蜡。为了做到这一步，切片在脱蜡前的加温将有助于完成上述的要求。比如：当天切的切片，烧烤2小时后进行染色，切片带有温度进行脱蜡这将可加速脱蜡的过程，如果预先切好烤好的切片，在染色前，还必须对切片进行加温10-20分钟，然后再行脱蜡，这样脱蜡速度加快，效果也会更好。VII、必须彻底抑制内源性过氧化物酶的活性，才能降低背景的染色。在各种组织中都含有很多的内源性过氧化物酶，尤其在红细胞，中性粒细胞，单核细胞嗜酸性细胞，出血的组织坏死的组织等等。含有这种酶的各细胞和组织如果在染色前不对其进行处理和抑制，它们将会在DAB底物的显色时，与HRP一样催化底样，使之显色，使之生成与阳性物一样的黄棕色，造成混乱。为止，在免疫组化染色前，都必须对内源性过氧化物酶进行抑制。当然，对它们进行彻底的消除是不行的，因为抑制太厉害，对抗原也会有相同的抑制作用。氢在抑制内源性过氧化物酶时，也要注意对抗原的保护，抑制也只能针对它们中的大部分，在DAB显色后，显示出淡黄色，这就足以与真正阳性物区别。抑制剂常用的是0.3%的H2O2，也可将其称为1%H2O2，因为市售的H2O2的浓度为30%，按其净含量则为0.3%，如果按其溶液的用量则为1%。关于H2O2的使用，有的使用是单纯的H2O2稀释溶，有的使用是H2O2甲醇混合物。根据实验，认为H2O2甲醇较适合于大多数的情况，因为除了H2O2外，甲醇对各种酶，都有钝化的作用，因此H2O2甲醇的双重作用效果较好。陈尚平等认为在多数情况中，用甲醇H2O2已经获得令人满意的结果。VIII、须适当合理地使用封闭试剂为了减少背景产生的非特异性染色，在免疫组化染色的过程中，在加入一抗孵育前，常常加入非免疫动物血清，以减少背景的染色，陈尚季等认为：抗体是高度的电荷分子，可能与带有相应电荷的组织成分无特异性地结合（如胶原）。由于这种非特异性结合，将导致标记的部分局部化（轭合物）和胶原的假阳性染色。要用一种不相干的抗体居先处理，可能减少和标记的抗体无特异性结合。以往，血清的使用有很多，如：小牛血清，马血清，山羊血清，绵羊血清，兔血清，浓度也有很多种，如：1%.2%.或1：5、1：10、和1:20.必须选择合适的抗体以及对作适当的保存和配制。VVI、选择合适的抗体至今为止，应用于临床的常用抗体有几十种，在这当中又可分为两种类型。

免疫组化在临床工作的意义 近年来，随着免疫组织化学技术的发展和各种特异性抗体的出现，使许多疑难肿瘤得到了明确诊断。在常规肿瘤病理诊断中，5%-10%的病例单靠H.E.染色难以作出明确的形态学诊断。尤其是免疫组化在肿瘤诊断和鉴别诊断中的实用价值受到了普遍的认可，其在低分化或未分化肿瘤的鉴别诊断时，准确率可达50%-75%。 免疫组织化学的临床应用主要包括以下几方面： (1)恶性肿瘤的诊断与鉴别诊断； (2)确定转移性恶性肿瘤的原发部位； (3)对某类肿瘤进行进一步的病理分型； （4）软组织肿瘤的治疗一般需根据正确的组织学分类，因其种类多、组织形态相像，有时难以区分其组织来源，应用多种标志进行免疫组化研究对软组织肿瘤的诊断是不可缺少的； （5）发现微小转移灶，有助于临床治疗方案的确定，包括手术范围的确定。 （6）为临床提供治疗方案的选择。免疫组化是判定肿瘤是良性恶性的。一般子宫肌瘤术后都会做，没关系的。子宫肌瘤95%都是良性的，不要怕。一切要等切片出来才能定论。

这个得看病理诊断是什么？如果是B细胞淋巴瘤，值得关注。如果是炎细胞，这个增殖不值得忧虑。

意思是CKpan指标染色阳性。CKpan是指广谱细胞角蛋白，免疫组化染色CKpan主要用于上皮与非上皮成分的鉴别诊断，如低分化癌与肉瘤、淋巴瘤等的鉴别。 免疫组化，是应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及相对定量的研究。扩展资料免疫组织化学的临床应用：1、恶性肿瘤的诊断与鉴别诊断；2、确定转移性恶性肿瘤的原发部位；3、对某类肿瘤进行进一步的病理分型；4、软组织肿瘤的治疗一般需根据正确的组织学分类，因其种类多、组织形态相像，有时难以区分其组织来源，应用多种标志进行免疫组化研究对软组织肿瘤的诊断是不可缺少的；5、发现微小转移灶，有助于临床治疗方案的确定，包括手术范围的确定。6、为临床提供治疗方案的选择。参考资料来源：搜狗百科-免疫组化

HER2阴性这是一个啊免疫指标，这种指标如果强阳性的话可以应用一种靶向药物。可以提高化疗的有效率，对肿瘤治疗效果比较好，现在如果乳腺癌免疫组化三个加号。都是推荐应用该要的。也阴性的患者，不见因为。因为收益率非常低

wifgw石蜡切片免疫组化染色步骤石蜡切片免疫组化染色步骤1、载玻片的处理： 抗原修复过程中，由于高温、高压、辐射等诸多因素的影响，极易造成脱片。为保证试验的正常进行，可选用我公司提供的ZLI-9001 APES、ZLI-9003 HistogripTM或ZLI-9005 Poly-L-Lysine等几种试剂，对已清洗的载玻片进行处理。具体方法如下：1.1 APES：现用现配。将洗净的玻片放入以1:50比例丙酮稀释的APES中，停留20~30秒钟，取出稍停片刻，再入纯丙酮溶液或蒸馏水中涮去未结合的APES，置通风橱中晾干即可。用此载玻片捞片时应注意组织要一步到位，并尽量减少气泡的存在，以免影响染色结果。1.2 HistogripTM：将洗净的玻片放入以1:50比例丙酮稀释的Histogrip液中，停留1~2分钟，然后用双蒸水快速清洗三次，室温干燥或60oC烤箱烘烤一小时，装盒备用。1.3 Poly-L-Lysine：将洗净、干燥的载玻片放入以1:10比例去离子水稀释的多聚赖氨酸溶液中，浸泡5分钟，60oC烤箱烘烤一小时或室温过夜干燥。装盒备用。试验中使用的器具均为非玻璃制品。 2、常用酶消化： 2.1 胰蛋白酶：一般使用浓度为0.05%~0.1%，消化时间为37℃、10~40分钟，主要用于细胞内抗原的显示。2.2 胃蛋白酶：一般使用浓度为0.4%，消化时间为37℃、30~180分钟，主要用于细胞间质抗原的显示，如：Laminin（层粘蛋白），Collagen IV（IV型胶原）等。g/ml的saponin溶液，消化时间为室温孵育30分钟。uf06d 2.3 皂素（Saponin）：一般使用浓度为2~10 3、抗原热修复： 可根据实验室的具体条件，选用微波炉抗原修复、高压锅抗原修复或水浴高温抗原修复。抗原热修复可选用各种缓冲液，如TBS、PBS、重金属盐溶液等，但实验证明，以0.01M枸橼酸盐缓冲液（pH6.0）效果最好。请选用我公司提供的ZLI-9064 uf0b1枸橼酸盐缓冲液（粉剂）配制，取该粉剂一包溶于1000ml的蒸馏水中，混匀，其pH值在6.0 0.1，如因蒸馏水本身造成的pH值偏差，请自行调整。3.1 石蜡切片微波炉抗原修复操作方法：切片脱蜡至水后，3％H2O2处理10分钟，蒸馏水洗2分钟×3。将切片放入盛有枸橼酸盐缓冲液（工作液）的容器中，置微波炉内加热使容器内液体温度保持在92℃~98℃之间并持续10~15分钟（注意：无论是使用医用或家用微波炉，请根据具体机型酌情设置条件，务必满足以上步骤中对温度和时间的要求）。取出容器，室温冷却10~20分钟（注意：不可将切片从缓冲液中取出冷却，以便使蛋白能够恢复原有的空间构型）。PBS洗，下接免疫组化染色步骤。3.2 石蜡切片高压抗原修复操作方法：切片脱蜡至水。将1500ml~3000ml的枸橼酸盐缓冲液（工作液）注入不锈钢压力锅中加热至沸腾。切片置于金属架上，放入锅内，使切片位于液面以下，盖锅压阀。当压力锅开始慢慢喷气时（约加热5~6分钟后），计时1~2分钟，然后将压力锅端离热源，冷水冲至室温后，取下气阀，打开锅盖，取出切片，蒸馏水洗后，PBS洗2分钟×3，下接免疫组化染色步骤。3.3 石蜡切片电炉煮沸抗原修复操作方法：切片脱蜡至水后，放入盛有枸橼酸盐缓冲液（工作液）的容器中，并将此容器置于盛有一定数量自来水的大器皿中，电炉上加热煮沸，从小容器的温度到达92℃~98℃起开始计时15~20分钟，然后端离电炉，室温冷却20~30分钟，蒸馏水冲洗，PBS洗，下接免疫组化染色步骤。 4、免疫组化染色步骤： （以美国ZYMED公司SP试剂盒为例）石蜡切片脱蜡至水。3%H2O2室温孵育5~10分钟，以消除内源性过氧化物酶的活性。蒸馏水冲洗，PBS浸泡5分钟，(如需采用抗原修复，可在此步后进行)。5~10％正常山羊血清（PBS稀释）封闭，室温孵育10分钟。倾去血清，勿洗，滴加适当比例稀释的一抗或一抗工作液，37℃孵育1~2小时或4℃过夜。PBS冲洗，5分钟×3次。滴加适当比例稀释的生物素标记二抗（1%BSA-PBS稀释），37℃孵育10~30分钟；或滴加第二代生物素标记二抗工作液，37℃或室温孵育10~30分钟。PBS冲洗，5分钟×3次。滴加适当比例稀释的辣根酶标记链霉卵白素（PBS稀释），37℃孵育10~30分钟；或第二代辣根酶标记链霉卵白素工作液，37℃或室温孵育10~30分钟。PBS冲洗，5分钟×3次。显色剂显色（DAB或AEC）。自来水充分冲洗，复染，封片。冰冻切片免疫组化染色步骤m，室温放置30分钟后，入4℃丙酮固定10分钟，PBS洗，5分钟×3。用3％过氧化氢孵育5~10分钟，消除内源性过氧化物酶的活性。PBS洗，5分钟×2。uf06d冰冻切片4~8免疫组化非特异性染色的消除方法 一、非特异性染色的主要因素 组织的非特异性染色的机理很复杂，其产生的原因主要可分为以下几点： （1）一部分荧光素未与蛋白质结合，形成了聚合物和衍化物，而不能被透析除去 。 （2）抗体以外的血清蛋白与荧光素结合形成荧光素脲蛋白，可与组织成分结合。 （3）除去检查的抗原以外，组织中还可能存在类属抗原（如Forssman氏抗原），可与组织中特异性抗原以外之之相应抗体结合。 （4）从组织中难于提纯抗原性物质，所以制备的免疫血清中往往混杂一些抗其他组织成分的抗体，以致容易混淆。 （5）抗体分子上标记的荧光素分子太多，这种过量标记的抗体分子带过多的阴离子，可吸附于正常组织上而呈现非特异性染色。 （6）荧光素不纯，标本固定不当等。 二、消除非特异性染色的方法 消除荧光抗体非特异性染色的方法应根据产生的原因采取适当的方法，常用的方法有以下几种： （一）动物脏器粉末吸收法 常用肝粉（猪、大白鼠或小白鼠），其次是骨髓粉、鼠脑粉和鸡胚粉等。每毫升荧光抗体中加入肝粉50～100mg,在离心管中充分混匀，在室温中振动2h，4℃中过夜，再搅拌10min，高速离心（3000～15000r/min）30min，1～2次后，即可使用其上清液。吸收一般应在临用前进行，吸收后之荧光抗体保存冰箱中勿超过2周。染色应作吸收前后之比较，吸收时可先用缓冲盐水将组织干粉浸湿，离心（3000～15000r/min）30min，除去上清液，再加入荧光抗体进行吸收，以免消耗过多的抗体。 肝粉或新鲜细胞吸收是一种非特异性的消除方法，对荧光抗体的荧光色素和蛋白都有吸附作用。如检查组织中的病毒抗原时，也可用相同的组织干粉或匀浆沉淀物吸收之。 用脏器肝粉吸收对荧光抗体损失较多，如果根据Hiramotos氏等的方法将组织的20%生理盐水匀浆液，用生理盐水洗2～3次，12000r/min 10min离心沉淀，用其沉淀物吸收其荧光抗体即能完全达到目的，京极方久氏认为这样吸收对荧光抗体几乎没有损失，他们常用此法，效果甚佳，吸收后放置一周左右，用时有必要再吸收一次。 【肝粉的制法】 （1）将若干只小白鼠或大白鼠放血杀死，取出肝脏，用生理盐水洗2～3次，除去血液，剥掉表面的结缔组织的脂肪。 （2）剪碎，用生理盐水反复洗涤至无血色止，然后再加生理盐水少许，用组织捣碎机或匀浆器作成匀浆。 （3）将肝匀浆装入离心管内（1/3左右），交换地用2～3倍量生理盐水和丙酮反复洗涤各三次，至上清无血色止，每次完毕先用2000r/min离心沉淀15 min后，再除去上清液。 （4）最后用丙酮洗涤肝浆，再用布氏漏斗过滤，或离心沉淀，将沉淀物平铺在洁净的玻璃板上，37℃烤干（过夜）。 （5）在乳钵中充分研磨，用120目铜筛筛选过后，分装，密封，低温干燥保存。2006-12-22 13:24 wifgw二）透析法 荧光素如FITC分子可以通过半透膜，而蛋白质大分子不能透过，可将未与蛋白结合的荧光素透析除去。 （1）将标记完毕的荧光蛋白液装入一透析袋或玻璃纸袋内，液面稍留空隙，紧扎。 （2）浸入0.02mol/pH 7.1～7.4的PBS中（悬于大于标记物体积约50～100倍的PBS内），在4℃中透析，每日更换3～4次PBS，约5～7天，透析液中无荧即可（在荧光光源照射下）。 （三）葡聚糖凝胶G-50柱层析法 除游离荧光素可用2×46cm柱层析法，详细方法参阅第二章。加入荧光抗体15～18ml（按床体积的5%～10%加样），使其缓慢渗入柱内，待即将全部入柱时，加入PBS少许，关闭下口，停留30～40min ，使游离荧光充分进入细筛孔中，然后再接通洗脱瓶开始滴入洗脱液。加入洗脱液一定量后，荧光抗体即向下移行，逐渐与存留于上端的游离荧光素之间拉开明显的界线，随着大量洗脱液的不断加入，二者分离距离越来越大，荧光抗体最先流出，分前、中、后三部分收集，测F/P比值，合格者合并，浓缩，分装。洗脱液用20%磺基水杨酸测定蛋白（发生沉淀反应），继续洗脱，游离荧光素则相继被洗脱下来，至洗脱液中无蛋白和荧光素后，此层析柱即可再用。 若用以除去荧光抗体中的游离荧光素和硫酸铵等盐类，可先在过柱前透析一夜，否则，NH4+太浓，在蛋白未完全洗脱时即出现NH4+，因而影响提纯与回收蛋白，一般待洗脱液出现蛋白时，即进行收集，之后出现SO4++（用1%BaCl2检查发生白色沉淀）。最后是NH4+，（用纳氏试剂检查呈黄棕色沉淀），待洗脱液无SO4++及NH4+后可再用。 如仅用小量荧光抗体，可用1×20cm的柱层析柱，取2g Sephadex G-50装柱，即可过滤2～3.5ml荧光抗体。 （四）DEAE纤维素柱层析法 标记过多或过少荧光素的抗体分子可用DEAE-纤维素柱层析法除去。方法如下： DEAE-纤维素柱的装柱，洗脱、再生方法等与提纯IgG方法相同。装柱所需DEAE-纤维素量以干重每克交换20～50mg标记蛋白量为宜 。常用梯度洗脱法如下： （1）层析柱用0.01mol/L、pH7.2PB平衡，标记物上柱后，先用0.01mol/L、pH7.2PB洗脱，洗出无色或淡绿色液体，洗脱液量（根据床体积大小每梯度乘3），然后依下列各种离子强度洗脱液， 分别洗脱和收集： 0.01mol/L、pH7.2PBS（0.05mol/L NaCl）……洗脱部分1。 0.01mol/L、pH7.2PBS（0.01mol/L NaCl）……洗脱部分2。 0.01mol/L、pH7.2PBS（0.02mol/L NaCl）……洗脱部分3。 将此三部分收集液（每管5ml）分别测定其F/P比值，0.05mol/L NaCl pH7.2PB洗脱液280nm光密度高峰管合并，浓缩保存备用。因这部分非特异性染色荧光最少，是比较好的荧光抗体。其他两部分可以废弃。 （2）柱上吸附的过度标记蛋白可继续增加NaCl的浓度至 2.0mol/L洗脱完。 经过DEAE-纤维素层析后的标记抗体，其抗体量一般约损失50%，因此有些要求不太高的抗体，如抗细菌荧光抗体，不一定要这样处理，可用染色效价测定的稀释法除去非特异性染色。 （五）荧光抗体稀释法 先测定荧光抗体特异性染色与非特异性染色的效价，若二者效价相差较大，则可将荧光抗体稀释至一临界浓度，使特异性染色呈阳性，而使非特异性染色保持阴性，稀释方法和染色效价测定方法相同。 （六）纯化抗原法 用各种方法提纯单一成分的抗原是产生单价特异性抗体的最主要条件。近代免疫化学技术（免疫吸收法）和柱层析法等提供了很大的可能性，可参考有关专著。 （七）纯化抗体法---免疫吸收法 例如抗IgA血清的纯化方法---免疫吸收法。如分泌型IgA（ SIgA）抗原纯度不高，所制的抗血清常与IgG呈交叉反应，为此需要吸收，常采用纯化的人IgG戊二醛聚合物加以吸收纯化。方法如下： 1．人IgG聚合物的制备 在5ml含40mg/ml人IgG的0.1mol/L pH7.0磷酸缓冲溶液中，加入2.5%戊二醛溶液1ml，边加边搅，5min即出现混浊，逐现大块胶块，放置30min后，用研钵将凝胶磨细，继用1.0mol/L pH7.0磷酸缓冲溶液反复洗涤3次，末次加蒸馏水至20ml，即为人IgG聚合物悬液。 2．免疫吸收法 将待吸收的抗SIgG血清加入待量IgG聚合物悬液，置室温搅拌60min,离心沉淀，上清液即稀释1倍的纯化抗SIgA血清。如用IgG聚合物作少量分次吸收，其效果更好。 （八）伊文氏蓝（Evans blue）衬染法 用0.01%伊文氏蓝的0.01mol/L pH7.2PBS稀释荧光抗体，可将背景细胞和组织染色，呈红色荧光，与特异性黄绿色荧光形成鲜明的对比，减少了非特异性荧光，宜作常规应用。伊文氏蓝一般先配成1%溶液，保存于4℃，用前再稀释至0.01%用以 和然释荧光抗体。 此外，还可以用胰酶消化组织切片或用10%牛血清蛋白封闭法等消除非特异性染色，提高特异性染色。

可能引起免疫组化染色失败的原因是：（） A.抗体浓度过高或过低(正确答案) B.使用多克隆抗体 C.抗原没有暴露(正确答案) D.使用稀释后的浓缩抗体 E.洗涤不充分(正确答案)

【释义】：是广谱上皮标记，是上皮来源。免疫组化，是应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及相对定量的研究。【分类】：免疫荧光细胞化学技术。免疫酶细胞化学技术。免疫胶体金技术。动物体内外的所有游离面上被覆着的细胞层。构成它的组织称为上皮组织，其细胞称为上皮细胞。原则上在上皮内见不到血管，并且几乎没有非细胞部分（细胞间隙部分）。具有借基底膜与结缔组织相邻接等特征。

可做NF、NSE、S－100、Syn。NF：神经细丝（neurofilaments, NF）分布于神经纤维

低度恶性 意思转移慢 容易治疗

免疫组化操作步骤一 免疫组化（ LP 法）操作步骤 ： 1． 切片常规脱蜡至水。如需抗原修复，可在此步后进行 2. 缓冲液洗 3min/2 次。 3. 为了降低内源性过氧化物酶造成的非特异性背景染色 , 将切片放在 Hydrogen Peroxide Block 中孵育 10-15 分钟。 4. 缓冲液洗 5min/2 次。 5. 滴加 Ultra V Block ， 在室温下孵育 5 分钟以封闭非特异性的背景染色。 （注：孵育不要超过 10 分钟，否则会导致特异性染色降低。如果一抗的稀释液中含有 5 － 10% 正常羊血清，这一步可以省略。） 6. 缓冲液洗 5min/2 次。 7. 滴加一抗工作液 37 ℃孵育 1 － 2 小时。（具体孵育时间和温度由试验者最终决定） 8. 缓冲液洗 5min/2 次。 9 ． 滴加 Primary Antibody Enhancer( 增强子 ) , 在室温下孵育 20 分钟。 10 ．缓冲液洗 5min/2 次。 11 ．滴加 HRP Polymer( 酶标二抗 ) ，在室温下孵育 30 分钟。 （注： HRP Polymer 对光敏感，应避免不必要的光暴露并储存在不透明的小瓶中。） 12 ．缓冲液洗 5min/2 次。 13 ．向 1ml DAB Plus Substrate ( 或 AEC Plus Substrate) 中滴加 1-2 滴 DAB Plus Chromogen （或 AEC Plus Chromogen ） , 混匀后滴加到切片上，孵育 3 － 15 分钟。（具体时间由染色深浅决定。） 14 ．自来水充分冲洗 , 复染，脱水 , 透明 , 封片。 二．免疫组化 ( 三步法 ) 操作步骤 ： （ 1 ）、石蜡切片脱蜡至水。 （ 2 ）、 3%H 2 O 2 室温孵育 5-10 分钟，以消除内源性过氧化物酶的活性。 （ 3 ）、蒸馏水冲洗， PBS 浸泡 5 分钟 x2 （如需抗原修复，可在此步后进行）。 （ 4 ）、 5-10% 正常山羊血清（ PBS 稀释）封闭，室温孵育 10 分钟，倾去血清，勿洗。滴加 一抗 工作液， 37 ℃ 孵育 1-2 小时或 4 ℃ 过夜。 （ 5 ）、 PBS 冲洗， 5 分钟 x3 次。 （ 6 ）、滴加适量 生物素标记二抗 工作液， 37 ℃ 孵育 10-30 分钟。 （ 7 ）、 PBS 冲洗， 5 分钟 x3 次。 （ 8 ）、滴加适量的 辣根酶或碱性磷酸酶标记的链霉卵白素 工作液， 37 ℃ 孵育 10-30 分钟。 （ 9 ）、 PBS 冲洗， 5 分钟 x3 次。 （ 10 ）、显色剂显色 3-15 分钟（ DAB 或 NBT/BCIP ） （ 11 ）、自来水充分冲洗，复染，脱水，透明，封片。 三. 冰冻切片免疫组化染色步骤： 冰冻切片 4-8um ，室温放置 30 分钟后，入 4 ℃丙酮固定 10分钟，PBS洗，5分钟x3，用过氧化氢孵育5-10分钟，消除内源性过氧化物酶的活性。以下同石蜡切片免疫组化

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。免疫组化和特殊染色是病理检查中常用的检测方法，免疫组化全称是免疫组织化学染色，病理检查中最常用的是HE染色，使用非HE染色的检测方法都可以称为特殊染色。都是病理检查中对送检组织进行的处理方法，组织经过一系列的处理之后才能在显微镜下观察其有无病变，病变是什么等。扩展资料：免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体，单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。参考资料来源：百度百科-免疫组化

20%。根据查询免疫染色通透液配方，500毫升免疫染色通透液含有曲拉通200毫升，为20%。曲拉通成分为聚氧乙烯-8-辛基苯基醚，又称为聚乙二醇对异辛基苯基醚。

CKpen阳性，提示为上皮性肿瘤；ki67中等阳性，提示肿瘤细胞增殖较活跃，恶性程度较高，预后较差；

免疫组化是利用抗原与抗体间的特异结合原理和特殊的标记技术，对组织和细胞内的特定抗原、抗体进行定位、定性、定量的一们技术。我们都是先进行免疫组化，在DAB染色后进行HE染色。既能看到免疫组化的结果，又能看到细胞的形态，CD34+免疫组化染色后是棕色的颗粒，效果很好。 1）做免疫组化的片子最好不要同时做HE染色，因为那样会掩盖阳性着色的结果；而且用苏木素复染细胞核也是淡染，若要在免疫组化的片子上观察形态学的改变，除非有非常典型的表现，一般是有很大的难度的。 2）你是培养的细胞做免疫组化吗？如果是的话，那就每个样本只有一张片子吧？唯一的办法是进行免疫双染，同时做CD34和AFP（甲胎蛋白）。我觉得后者阳性便可以或多或少的获得向肝细胞分化的证据。 3）用HE染色来识别造血干细胞向肝细胞分化，也就是说要看到肝细胞的典型形态学改变后才可以下结论。问题是：早期的肝细胞仅凭形细胞态学观察并不能很容易的被识别。病理大夫看组织切片，重要的是看其组织学结构，对肝细胞也是这样。如果单拿出来一个细胞，还是培养的细胞，染色后真的不容易区分。所以我觉得你设计的用HE染色来确定早期细胞向哪个方向分化不是很有说服力。 4）如果是切片，也就是说每个样本可以有多张切片，那可以在连续切片上分别染CD34和AFP，拍照时选择相同视野，也有一定说服力。但是还是不如双染法更可靠。 5）用双染最大的问题在于：这两者都表达在胞浆中，染色容易相互覆盖。所以在双染的方法选择上你还要再考虑一下，可不可以用免疫荧光双染？这样也很有说服力的

多重免疫酶标记染色以酶催化不同底物呈现不同颜色产物标示同一切片内两种或两种以上抗原为理论基础所建立起来的多重免疫标记染色方法。在光镜下可以同时观察和对比，样品保存时间相对较长，一次曝光即可成像，故较双重免疫荧光染色法更为常用。常用标记酶与底物的配伍单酶双底物--HRP--DAB (棕色):4CN(蓝色)AEC(红色):4CN(蓝色)AP-萘酚AS-MX-坚固红(fast red 红色)-坚固蓝(fast blue 蓝色)双酶双底物--HRP (DAB ) :AP(萘酚AS.MX-坚固蓝)HRP(4CN):AP(萘酚AS.MX-坚固红)（直接法、间接法、桥法均可使用，灵敏度以桥法中的复合物法最高，特异性则以直接法最佳）

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。这些检查结果为阳性，可以见于胃癌，结肠癌等疾病，具体需根据伴随症状分析，如果是有胃痛，胃胀，打嗝，反酸，可以见于胃癌，需做个胃镜检查，如果是左下腹部疼痛，腹胀，排便困难，可以见于结肠癌。需去医院就诊，来明确诊断，如果是有胃癌或结肠癌，需尽早使用手术切除治疗，然后使用些化疗药物，中医中药治疗。

免疫组化染色是一种检查方法，是可以辨别疾病预后情况的，现在的情况如果是是免疫组化预后良好，一般是不会恶变的，只要是积极治疗就可以的

软组织肿瘤类型很多，由于普通病理切片还不能确定是哪种类型的肿瘤，因此通过一些特异性表达某种肿瘤的抗体进行标记，有望获得明确的病理诊断，所以要借助于免疫组化及特殊染色。经过上述技术，明确诊断后才能分析是否良恶性。如果做病理后医生要求做免疫组化，则一般可能有两个可能，第一，目前无法确认是否属于癌症，需要进一步明确；第二，已经知道属于癌症，但是癌症细胞的来源、类型还需要进一步的明确以知道后面的治疗。免疫组化，是应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及相对定量的研究，称为免疫组织化学技术(immunohistochemistry)或免疫细胞化学技术(immunocytochemistry)。

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。免疫组化和特殊染色是病理检查中常用的检测方法，免疫组化全称是免疫组织化学染色，病理检查中最常用的是HE染色，使用非HE染色的检测方法都可以称为特殊染色。都是病理检查中对送检组织进行的处理方法，组织经过一系列的处理之后才能在显微镜下观察其有无病变，病变是什么等。扩展资料：免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体，单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。参考资料来源：百度百科-免疫组化

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。免疫组化和特殊染色是病理检查中常用的检测方法，免疫组化全称是免疫组织化学染色，病理检查中最常用的是HE染色，使用非HE染色的检测方法都可以称为特殊染色。都是病理检查中对送检组织进行的处理方法，组织经过一系列的处理之后才能在显微镜下观察其有无病变，病变是什么等。扩展资料：免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体，单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。参考资料来源：百度百科-免疫组化

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。免疫组化和特殊染色是病理检查中常用的检测方法，免疫组化全称是免疫组织化学染色，病理检查中最常用的是HE染色，使用非HE染色的检测方法都可以称为特殊染色。都是病理检查中对送检组织进行的处理方法，组织经过一系列的处理之后才能在显微镜下观察其有无病变，病变是什么等。扩展资料：免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体，单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。参考资料来源：百度百科-免疫组化

I、为达到免疫组织化学技术的要求，组织固定越新鲜越好。在免疫组化最后结果的判断时，常可见到均匀一片的似非特异性染色的现象，经多方研究认为，它是一种假性非特异性的染色。因为肿瘤组织中含有的抗原较易发生扩散弥散，肿瘤细胞无限制的生长和生长过速，导致肿瘤中间部分组织血液供给困难，造成缺血坏死，坏死细胞中的抗原由于机体的作用，可以被均匀地散布于细胞与细胞间的间质，这是抗原发生弥散的一种方式。另一种抗原弥散的方式就是，由于组织没有及时的固定所引起的。离体的组织不及时固定，组织就会自溶，抗原就会扩散，这是一非常普通的常识，但要做好却是极不容易。标本从外科切除到浸入固定液需要经过一段时间，在这段时间里，有的抗原就可以发生扩散。虽然已浸入了固定液，但标本较大，固定液的量又不足，当然由于固定液的渗透需要时间，当渗入到组织之中时，中间的细胞已发生了变化，抗原也随着发生扩散，这种现象在产酶多的器官是比较明显的，如胃癌，当切除后标本较大，虽然在手术室期间已放入了固定液，但固定液要透过肌层达到胃粘膜面起码需要几个小时的时间，当固定液发挥作用时，组织已经发生变化。因此，这了达到免疫组织化学染色的要求，对于离体的组织尽量快的进行固定，有条件的应将其剖开，早取材，早固定。II、组织脱水必须彻底干净组织块取材不能太大过厚，才能较好地完成脱水的过程。如果取材太厚，在较短的时间内脱水不完全，将可引起一系列的问题，比如浸蜡不彻底，切片不好完成，切不完整。由于先天不足，导致后来切片染色的脱落，造成染色的失败，或者由此反复操作，造成人力物力的浪费，造成病理报告的延期发出等。因此，对取材的要求是除了要求要有艺术性外，即平整、外观好看，还要求适中。III、切片必须完整、均匀、平展、无邹折、应用于免疫组织化学染色的切片，对切片的质量要求较高，切片必须完整，平展、无汽泡，无邹折，这样有利在染色时的冲洗，有利于切片的牢固附贴。如果切片不平展，免疫组化染色后，可出现染色不均匀的现象，颜色深浅不一，　不平。如果切片有汽泡切片在烘烤时，由于汽泡的破裂影响了汽泡周围的组织，在其周围可观察到深浅不一的染色。如果切片有邹折，免疫组化染色后，在邹折的地方有深浅不一的颜色，这是一种假阳性，容易引起混淆。IV、切片的附贴必须牢固，必须使用合适的粘贴剂。免疫组织化学染色前的前期准备工作，就是必须对新的载玻片进行处理，新的载玻片表面看起来很干净，有人认为不需要进行任何的处理，都能够适合使用，这是一种错误的想法。新出厂的载玻片，表面复盖着开一层油脂样的物质，如果不加以处理，对切片的附贴是极为不利的。我们的做法是：新的载玻片，放于玻璃清洗液中浸泡4小时甚至过夜，然后取出，经自来水彻底冲洗后，浸入酒精中达2小时以上，取出擦干备用或烘干也可。然后再将载玻片浸入了－氨基－三乙氧基－硅烷（3－Aminopropyl triethoxy-silane）的稀释液（1：50用丙酮或无水乙醇稀释都可以）中硅化10分钟，后经无水乙醇洗2次，烘干即可使用。V、切片必须烘烤附贴牢固，既要经得起抗原修复时高温的作用而不使轻易脱片，又不至于破坏抗原。应用于免疫组化染色的切片。由于整个过程需经几个阶段的处理，如抗原修复时抗原修复液的沸腾且需持续十几分钟，PBS的反复冲洗，有的甚至于4℃冰箱中孵育达十几小时。因此，对切片的质量要求很高，尤其是切片的附贴程度。以往有人主张切片在60℃以下烘烤30-60分钟即可按此进行结果是切片掉片严重，切片松动率占100%。切片究竟烘烤多长时间才合适，既不脱片和适合各项要求，又不至于破坏抗原。几组实验[]诊断P173认为，切片在60℃的恒温干燥箱中烘烤2-5小时最为合适。这是因为：抗原可耐受如此的温度，病理科一般使用的石蜡，其熔点在60℃左右，组织浸蜡时，浸蜡箱中的温度，一般都调在65℃左右，组织在这样温度中要浸泡2小时以上，才能达到彻底地浸蜡。组织中的抗原已经受了65℃的温度考验，保存下来的抗原，都已具有耐热性。另外，经上述时间烘烤出来的切片，附贴牢固，抗原保存好，染色成功率达100%，保证了病理诊断的及时性和准确性。特需要注意的是，不管是应用于诊断的切片还是研究用的切片，烘烤后应尽快进行染色。如果切片切完后，迟迟不进行染色，存放于室温中或工作冰箱中，切片中的抗原将会随着时间的延长而逐渐消失，甚至出现假阴性。原则上是新鲜切片，即行染色，染多少张切多少张，这样才能尽可能的保存表达更多的抗原。VI、切片脱蜡必须干净，否则将会影响免疫组化染色的最后结果。蜡不溶于水，不与其它的临床使用的抗体相融合。它只能靠特用的试剂，处理足够的时间，才能将其除去。如果脱蜡不干净，少许蜡存留于切片上，将会引起许多弊病，如染色不均匀，阳性物时隐时现，真假难辨，背景染色增加等。为了解决上述的问题，切片在染色前必须彻底脱蜡，目前用于脱蜡的试剂主要是二甲苯，因它脱蜡力强，脱蜡时间较短。较受使用者的青睐。脱蜡的时间要根据季节，室温和试剂的新鲜程度采用不同脱蜡时间。如果在夏天，室温较高，脱蜡试剂也新鲜，则脱蜡时间不需很多，3-5分钟就已足够。如果在冬天，室温较低，脱蜡试剂也较陈旧，则脱蜡时间需要延长，10-20分钟或更长。总之，操作时应根据不同的季节，不同的室温，不同的试剂来决定脱蜡的时间，原则上是要彻底，干净，完全地脱去切片上的蜡。为了做到这一步，切片在脱蜡前的加温将有助于完成上述的要求。比如：当天切的切片，烧烤2小时后进行染色，切片带有温度进行脱蜡这将可加速脱蜡的过程，如果预先切好烤好的切片，在染色前，还必须对切片进行加温10-20分钟，然后再行脱蜡，这样脱蜡速度加快，效果也会更好。VII、必须彻底抑制内源性过氧化物酶的活性，才能降低背景的染色。在各种组织中都含有很多的内源性过氧化物酶，尤其在红细胞，中性粒细胞，单核细胞嗜酸性细胞，出血的组织坏死的组织等等。含有这种酶的各细胞和组织如果在染色前不对其进行处理和抑制，它们将会在DAB底物的显色时，与HRP一样催化底样，使之显色，使之生成与阳性物一样的黄棕色，造成混乱。为止，在免疫组化染色前，都必须对内源性过氧化物酶进行抑制。当然，对它们进行彻底的消除是不行的，因为抑制太厉害，对抗原也会有相同的抑制作用。氢在抑制内源性过氧化物酶时，也要注意对抗原的保护，抑制也只能针对它们中的大部分，在DAB显色后，显示出淡黄色，这就足以与真正阳性物区别。抑制剂常用的是0.3%的H2O2，也可将其称为1%H2O2，因为市售的H2O2的浓度为30%，按其净含量则为0.3%，如果按其溶液的用量则为1%。关于H2O2的使用，有的使用是单纯的H2O2稀释溶，有的使用是H2O2甲醇混合物。根据实验，认为H2O2甲醇较适合于大多数的情况，因为除了H2O2外，甲醇对各种酶，都有钝化的作用，因此H2O2甲醇的双重作用效果较好。陈尚平等认为在多数情况中，用甲醇H2O2已经获得令人满意的结果。VIII、须适当合理地使用封闭试剂为了减少背景产生的非特异性染色，在免疫组化染色的过程中，在加入一抗孵育前，常常加入非免疫动物血清，以减少背景的染色，陈尚季等认为：抗体是高度的电荷分子，可能与带有相应电荷的组织成分无特异性地结合（如胶原）。由于这种非特异性结合，将导致标记的部分局部化（轭合物）和胶原的假阳性染色。要用一种不相干的抗体居先处理，可能减少和标记的抗体无特异性结合。以往，血清的使用有很多，如：小牛血清，马血清，山羊血清，绵羊血清，兔血清，浓度也有很多种，如：1%.2%.或1：5、1：10、和1:20.必须选择合适的抗体以及对作适当的保存和配制。VVI、选择合适的抗体至今为止，应用于临床的常用抗体有几十种，在这当中又可分为两种类型。

DAB 显色时间不是固定的，主要由显微镜下控制显色时间，到出现特异性染色较强而本底着色较浅时即可冲洗；DAB 显色时间很短（如几秒或几十秒）就出现很深的棕褐色，这很可能说明你的抗体浓度过高或抗体孵育时间过长，需要下调抗体浓度或缩短你的抗体孵育时间；此外，若很短时间就出现背景很深，还有可能你前面的封闭非特异性蛋白不全，需要延长封闭时间；DAB 显色时间很长（如超过十几分钟）才出现阳性染色，一方面可能说明你的抗体浓度过低或孵育时间过短（最好一抗4 度过夜）；另一方面就是封闭时间过长。百替生物专业帮助您代做免疫组化方面的实验，网址http://www.100biotech.com/index.php，来看看吧！

Ki67，在很多肿瘤病理中做，它是判断肿瘤细胞增殖情况的一个指标，越高表示正在肿瘤细胞增殖多，恶性程度越高。P16，是一个抑癌基因，直接作用于细胞周期、抑制细胞分裂的基因，细胞内P16蛋白减少，会引起细胞周期调节紊乱，使细胞无限制增生，甚至癌变。

（一）、仪器设备1）18cm不锈钢高压锅或电炉或医用微波炉；2）水浴锅（二）、试剂1）PBS缓冲液（pH7.2～7.4）：NaCl 137mmol/L，KCl 2.7mmol/L，Na2HPO4 4.3mmol/L，KH2PO4 1.4mmol/L.2）0.01mol/L柠檬酸盐缓冲液（CB，pH6.0，1000ml）：柠檬酸三钠 3g，柠檬酸 0.4g.3）0.5mol/L EDTA缓冲液（pH8.0）：700ml水中溶解186.1gEDTA·2H2O，用10 mmol/L NaOH调至pH8.0，加水至1000ml.4）1mol/L的TBS缓冲液（pH8.0）：在800ml水中溶解121gTris碱，用1N的HCl调至pH8.0，加水至1000ml.5）酶消化液： a、0.1%胰蛋白酶液：用0.1%CaCl2（pH7.8） 配制。 b、0.4%胃蛋白酶液：用0.1N的HCl配制。6）3%甲醇-H2O2溶液：用30%H2O2和80%甲醇溶液配制。7）封裱剂：a、甘油和0.5mmol/L碳酸盐缓冲液（pH9.0～9.5）等量混合；b、油和TBS（或PBS）配制。8）TBS/PBS pH9.0～9.5，适用于荧光显微镜标本；pH7.0～7.4适合于光学显微镜标本。（三）、操作流程1、脱蜡和水化脱蜡前，应将组织芯片在室温中放置60分钟或60℃恒温箱中烘烤20分钟。1）组织芯片置于二甲苯中浸泡10分钟，更换二甲苯后再浸泡10分钟；2）无水乙醇中浸泡5分钟；3）95%乙醇中浸泡5分钟；4）70%乙醇中浸泡5分钟；2、抗原修复用于福尔马林固定的石蜡包埋组织芯片。1）抗原热修复（1）高压热修复 在沸水中加入EDTA（pH8.0）或0.01M枸橼酸钠缓冲溶液（pH6.0）。盖上不锈钢高压锅的盖子，但不进行锁定。将玻片置于金属染色架上，缓慢加压，使玻片在缓冲液中浸泡5分钟，然后将盖子锁定，小阀门将会升起来。10分钟后，去除热源，置入凉水中，当小阀门沉下去后打开盖子。本方法适用于较难检测或核抗原的抗原修复。（2）煮沸热修复 电炉或者水浴锅加热0.01M枸橼酸钠缓冲溶液（pH6.0）至95℃左右，放入组织芯片加热10~15分钟。（3）微波热修复 在微波炉里加热0.01M枸橼酸钠缓冲溶液（pH6.0）至沸腾后将组织芯片放入，断电，间隔5~10分钟，反复1-2次。适用的抗原有：AR，Bax，Bcl-2，C-fos，X-jun，C-kit，C-myc，E-cadherin，Chromogranin A，Cyclin，ER，Heat shock protein，HPV，Ki-67，MDMZ，p53，p34，p16，p15，P-glycoprotein，PKC，PR，PCNA，ras，Rb，TopoismeraseⅡ等。2）酶消化方法 常用0.1%胰蛋白酶和0.4%胃蛋白酶液。胰蛋白酶使用前预热至37℃，切片也预热至37℃，消化时间约为5~30分钟；胃蛋白酶消化37℃时间为30分钟。适用于被固定遮避的抗原，其中有：Collagen，Complement，Cytokeratin，C-erB-2，GFAP，LCA，LN等。3、免疫组织化学染色SP法1）脱蜡、水化；2）PBS洗2～3次各5分钟；3）3%H2O2（80%甲醇）滴加在TMA上，室温静置10分钟；4）PBS洗2～3次各5分钟； 5）抗原修复；6）PBS洗2～3次各5分钟；7）滴加正常山羊血清封闭液，室温20分钟。甩去多余液体。8）滴加Ⅰ抗50μl，室温静置1小时或者4℃过夜或者37℃1小时。9）4℃过夜后需在37℃复温45分钟。10）PBS洗3次各5分钟；11）滴加Ⅱ抗40～50μl，室温静置，或37℃1小时；12）II抗中可加入0.05%的tween-20.13）PBS洗3次各5分钟；14）DAB显色5～10分钟，在显微镜下掌握染色程度；15）PBS或自来水冲洗10分钟；16）苏木精复染2分钟，盐酸酒精分化；17）自来水冲洗10～15分钟；18）脱水、透明、封片、镜检。SABC法1）脱蜡、水化。2）PBS洗两次各5分钟。3）用蒸馏水或PBS配置新鲜的3%H2O2，室温封闭5～10分钟，蒸馏水洗3次。4）抗原修复。5）PBS洗5分钟。6）滴加正常山羊血清封闭液，室温20分钟。甩去多余液体。7）滴加Ⅰ抗，室温1小时或者4℃过夜或者37℃1小时（4℃过夜后在37℃复温45分钟）。8）PBS洗三次每次2分钟。9）滴加生物素化二抗，20℃～37℃20分钟。10）PBC洗3次每次2分钟。11）滴加试剂SABC，20℃～37℃20分钟。12）PBS洗4次每次5分钟。13）DAB显色：DAB显色试剂盒或者自配显色剂显色（镜下掌握显色程度）。14）蒸馏水洗。苏木素复染2分钟、盐酸酒精分化。15）脱水、透明、封片、镜检。

(1)首先要确定免疫组化技术是否合格，合格的染色结果应该是背景颜色浅淡或无着色，而阳性标志物清晰和定位明确。(2)不仅要判断所检组织中有或无阳性标记物，还要注意阳性信号的分布部位和形态特征。一般说来，阳性信号应与被测抗原所在的部位一致。此处所说的部位包括组织和细胞的不同区域。(3)阴性染色结果是组织内预期特定区域中未见抗原表达，但阴性结果不能立即认为是否定意义。免疫组化的意义（1）恶性肿瘤的诊断与鉴别诊断。（2）确定转移性恶性肿瘤的原发部位。（3）对某类肿瘤进行进一步的病理分型。（4）软组织肿瘤的治疗一般需根据正确的组织学分类，因其种类多、组织形态相像，有时难以区分其组织来源，应用多种标志进行免疫组化研究对软组织肿瘤的诊断是不可缺少的。（5）发现微小转移灶，有助于临床治疗方案的确定，包括手术范围的确定。（6）为临床提供治疗方案的选择。

主要用于病理诊断，协助判断疾病类型和严重程度。H.E的话主要观察大体病变，一般的组织学病变，而免疫组化可以检测某一种因子或者抗原抗体的表达，进行定位定量

师兄用的晶安生物的细胞爬片。晶安生物细胞爬片免疫组化法： 1 胰酶消化细胞，收集至离心管；调整样本细胞数为1×106 /ml； 2 将单细胞悬液滴加至平皿内无菌载玻片表面，置于37℃ 5%的加湿CO2孵箱中过夜，使细胞爬片。 3 吸弃平皿内培养上清，加入新鲜培养基，用无菌培养基洗3次； 4 PBS冲洗相应方案的载玻片3次； 5 将载玻片置于95%乙醇中固定约1h； 6 倒置相差显微镜下观察，并划定载玻片上细胞爬片密集区； 7 在相应区域滴加按一定比例稀释后一抗，4℃冰箱内过夜湿孵。阴性对照以PBS缓冲液代替一抗。 8 先暂复温30min，后PBS冲洗载玻片3次； 9 滴加二抗，室温湿孵30min；后PBS冲洗载玻片3次； 10 DAB显色：将配置好的DAB溶液滴加至载玻片上，室温下孵育3min至载玻片略显黄色； 11 清水充分冲洗载玻片，苏木素复染核3-5min，清水冲洗，盐酸酒精分化20s，清水冲洗，氨水返蓝3min，清水冲洗，后置于75%-80%-95%-无水酒精中脱水，每步骤约2min； 12 将载玻片置于1、2、3道二甲苯中，各约15min，中性树脂封片，置于阴凉通风处风干。

在病理诊断工作中，乳腺某些良恶性病变的鉴别往往给病理医生带来很大的困难，如某些腺病与癌的鉴别、导管/小叶增生和不典型增生与原位癌的鉴别、原位癌与浸润癌的鉴别、导管内乳头状瘤与高分化囊内乳头状癌的鉴别、盲管性腺病与小管癌的鉴别等。一般来说，几乎所有的乳腺良性增生性病变(除微腺性腺病外)都存有肌上皮细胞（myoepithelial cell, MEC）；而绝大多数乳腺恶性上皮病变(除腺肌上皮-肌上皮细胞癌、腺样囊性癌、化生性癌和某些分化差的浸润性导管癌等少数癌外)通常查不到MEC[1]。因此，MEC的存在与否常常是区分乳腺良恶性病变的重要依据之一。在正常乳腺组织的H-E切片上MEC往往容易识别，但许多良性增生性病变（如硬化性腺病）常引起乳腺终未小叶单位结构和细胞成分的改变，致使MEC难以辨认。而且，在H-E切片上MEC有时和某些上皮细胞（epithelial cell，EC）、肌纤维母细胞、血管平滑肌细胞、血管周细胞、梭形或胞浆透亮的肿瘤细胞、上皮样组织细胞很难鉴别[2,3]。 因此寻找MEC敏感、特异强的标记物显得尤为必要。 目前常用的MEC标记物主要有肌源性蛋白、S100蛋白（包括S100-α、S100-β）、CD10、P63、CK和GFAP等。本文仅就各标记物在识别MEC上的优缺点做一综述。 ⒈ 肌源性蛋白 肌源性蛋白抗体中，肌动蛋白（actin）、肌特异性肌动蛋白(muscle-specific actin,MSA)、α-平滑肌肌动蛋白 (α-smooth muscle actin,α-SMA)、 calponin、平滑肌肌球蛋白重链(smooth muscle myosin heavy chain, SMMHC)等均在MEC的胞浆内表达。 1.1 actin、MSA和α-SMA 前两者为全肌肌动蛋白。这3种抗体是目前识别乳腺MEC最常用的抗体，均具有较高的敏感性和相对的特异性，乳腺EC和癌细胞通常不表达，但某些伴有肌上皮分化的癌(如化生性癌、低分化浸润性癌)常阳性。此外，他们也都可在血管平滑肌细胞及间质肌纤维母细胞中表达，而乳腺许多良恶性病变常伴有间质肌纤维母细胞和小血管的增生，这无疑为MEC的判定带来了困难[4-11]。。 1.2 calponin和SMMHC 这2种抗体是近年来应用于识别乳腺MEC的。Calponin是一种分子量为34KD的钙调节蛋白，具有结合原肌球蛋白和actin的功能，参与调节平滑肌细胞的收缩。SMMHC是分子量为200KD的多肽，是六聚肌球蛋白的结构成分。Dabbs 研究发现[12]，在乳腺良性病变的组织切片和针吸细胞涂片中，用免疫组织/细胞化学方法可检测到表达calponin和SMMHC的MEC，而间质细胞均为阴性；浸润性导管癌不表达calponin和SMMHC，但在少许区域中有calponin阳性的间质细胞；在导管原位癌中，calponin和SMMHC阳性的MEC沿癌细胞外周分布，其calponin阳性的MEC呈细线状，染色程度较正常乳腺小叶弱，而SMMHC在MEC的表达更弱，在显著扩张的导管周围缺少阳性细胞。Dabbs还在针吸细胞学观察中发现，大多数导管原位癌可见中等数量表达calponin的MEC细胞，因此认为在乳腺的针吸细胞学标本中，calponin和SMMHC二种抗体有助于乳腺浸润性导管癌和导管原位癌的鉴别，但某些导管原位癌的外周可缺乏MEC，因此calponin阴性不能作为诊断浸润性癌的依据。calponin和SMMHC仍然在血管平滑肌细胞上有表达，但肌纤维母细胞是否表达，意见尚不一致。多数人认为肌纤维母细胞一般不表达calponin和SMMHC，但有时可有极少数的肌纤维母细胞阳性[11]。和actin、MSA、α-SMA相比，calponin和SMMHC抗体有更高的敏感性和特异性，所以许多专家推荐用calponin和SMMHC抗体替代actin、MSA、α-SMA抗体，作为识别乳腺MEC的首选抗体。 ⒉ S100、S100-α和S100-β S100蛋白是一种酸性钙结合蛋白，是由α和β亚单位组成的二聚体，并因此被分成三种亚型：S100a0（α、α）、 S100a（α、β） 、S100b（β、β）。Egan等的免疫组化研究发现[13]：在乳腺纤维囊性病、硬化性腺病、乳头状瘤等良性病变中，MEC S100蛋白阳性，而EC、间质细胞和基底膜均为阴性。 在导管内癌和小叶原位癌中，肿瘤细胞和其周围残存的MEC均为S100蛋白阴性。故Egan认为S100蛋白有助于乳腺良性增生性病变和原位癌的鉴别。但Egan也发现在上皮增生病变中，不仅小导管周围的MEC S100蛋白阳性，增生的上皮细胞中也有散在的S100蛋白阳性细胞。。后来又有研究发现[14,15]：S100蛋白不仅表达于MEC和EC，大多数乳腺癌(包括乳腺原位癌)癌细胞也表达S100蛋白，所以S100蛋白作为MEC的标记物是不合适的。而且S100蛋白的免疫组化染色结果很不稳定，易受固定和免疫组化技术的影响。Egan和Smith发现用PAP法染色导管原位癌的MEC为S100阴性，而用免疫金银法时MEC则为S100阳性。这无疑为结果的判断带来了混乱。。 鉴于S100蛋白作为MEC标记物的局限性，有人试图利用S100蛋白的两个亚单位S100-α、S100-β来识别MEC。Ichihara研究发现[16]：在正常乳腺组织中，S100-α主要表达在EC，偶尔在MEC中也有表达。S100-β主要表达于MEC，少数EC也有表达。在乳腺良性上皮增生性病变中，增生的EC呈异质性，即增生的细胞为S100-α和/或S100-β阳性，而且S100-α和/或S100-β的阳性细胞与阴性细胞相间存在。导管原位癌的肿瘤细胞染色为同质性，均为S100-α阳性和S100-β阴性。Funahashi[17]在正常乳腺组织和乳腺良性病变中得到了类似的结果，在浸润性导管癌中，癌细胞只表达S100-α，不表达S100-β，认为S100-β作为MEC标记物比S100具有更高的特异性；但S100-β也低表达于少许EC和癌细胞，仍然需与actin连用才能特异的标记MEC。由于S100-α和S100-β在乳腺良性肿瘤中共同表达，而在乳腺癌的病例中只表达S100-α，故S100-α和S100-β抗体有助于乳腺良恶性疾病的鉴别. 3 CD10 CD10亦称普通急性淋巴母细胞性白血病抗原，主要用于恶性造血系统肿瘤的诊断。后来发现CD10也表达于非造血细胞，例如人的乳腺MEC，超微结构研究证实CD10主要表达于MEC的细胞膜[18]。Moritani[19]在石蜡切片上分别用CD10和SMA标记MEC，并将各自结果作了比较，发现CD10恒定表达于正常乳腺MEC的细胞膜上，在导管腺瘤、腺病、囊性腺体、导管增殖、纤维腺瘤和叶状肿瘤等良性病变中，MEC均为阳性，EC、血管平滑肌细胞和间质细胞为阴性；而在浸润性癌中，检测不到CD10阳性的MEC。因此CD10有助于腺病和浸润性导管癌、导管腺瘤和导管癌的鉴别。在伴有梗死的导管内乳头状瘤中，CD10能清楚地显示坏死区小导管的MEC，而SMA在该区域的染色很模糊。因此CD10和SMA相比能更清楚地显示梗死区域的MEC，有利于良恶性病变的鉴别。由于MEC和血管平滑肌细胞SMA均为阳性，所以在复杂的乳头状病变中，很难断定靠近EC的SMA阳性细胞是MEC还是血管平滑肌细胞；而MEC表达CD10，血管平滑肌细胞则为阴性，因此用CD10在复杂的乳头状病变中识别MEC优于SMA。在肿瘤细胞巢和间质之间，有时可发现一些间隙，在区分该间隙是人工间隙还是小血管常很困难。在浸润性导管癌中，由于不存在MEC，所以用SMA抗体有助于区分人工间隙和小血管。但在导管原位癌中，由于在某些癌细胞巢周围可查见MEC，因此SMA在此种情况下不能用于区分人工间隙和小血管。但SMA和CD10联合使用则可区分人工间隙和小血管。。尽管用CD10抗体识别MEC取得了较好的效果，但也有研究发现CD10表达于少许癌细胞和一些梭形间质细胞[18]。Moritani本人也发现CD10在正常乳腺组织的EC中有散在阳性[19]。 ⒋ P63 P63是P53基因家族的一个成员，表达于多种器官的基底细胞，如前列腺、皮肤和子宫颈等。P63蛋白的免疫组化染色主要定位于细胞核。在乳腺组织中，P63表达于MEC，EC不表达 [20]。Barareschi[2]研究也发现：在正常乳腺组织及乳腺良性病变组织中，P63只表达于MEC，在EC和肌纤维母细胞中皆无表达。在浸润性乳腺癌组织中，未见P63的表达。乳腺良性病变的细胞学涂片中，MEC呈“裸核”状， P63呈高表达；而浸润性癌的细胞学涂片中则无P63的表达。由于肌纤维母细胞不表达P63，所以P63抗体有助于肌纤维母细胞和MEC的鉴别。因抗P63为核阳性，所以在细胞学标本中，用P63标记MEC优于以上提到的胞浆和胞膜阳性的标记物。Werling在比较P63、calponin和SMMHC时发现[3]：P63敏感性低于后两者；但血管平滑肌细胞和间质肌纤维母细胞不表达P63，因此特异性高于后两者。P63抗体应用的局限性为：（1）少许肿瘤细胞可有表达；（2）由于P63为核阳性，而MEC在正常乳腺组织及良性乳腺病变组织中虽然是连续的，但MEC细胞核是分离的，因此P63在良性乳腺病变组织中不能显示连续的MEC，这虽然在大多数乳腺良恶性病变的诊断中不会造成困难，但在小管状硬化性腺病和小管癌鉴别时就会遇到困难。 ⒌ CK CK主要表达于上皮细胞中，根据分子量的不同将CK分为20种不同的类型。其中CK5、CK14和CK17都是基底细胞角蛋白，在乳腺组织中可表达于MEC的胞浆，因此三者的抗体都被用于识别MEC。其中CK14和CK17具有较高的敏感性，几乎表达于所有的乳腺MEC，CK5敏感性较前两者低。CK14和CK17也在极少许的EC中表达，CK5在部分EC中表达。在乳腺原位癌中，癌细胞不表达CK14和CK17；而9-31%的浸润性癌则有CK14和CK17表达；94%的浸润性癌CK5阳性[21,22]。 ⒍ GFAP GFAP是一种中间丝蛋白，主要存在于星形细胞内。免疫组化研究发现：在正常乳腺和乳腺的良性病变组织中，有部分MEC表达GFAP。乳腺原位癌中残存的MEC不表达GFAP。在乳腺原位癌和浸润性癌中，各种癌细胞均不表达GFAP。在乳腺的各种良性病变中，部分EC和间质的肌纤维母细胞可表达GFAP。但在乳腺癌的间质中，即使间质纤维化很严重，肌纤维母细胞也不表达GFAP，而表达SMA。综合以上结果可以发现：（1）GFAP的免疫组化染色有助于癌细胞与良性增生的EC和MEC的鉴别，而且在小管癌中有助于癌性小管（阴性）和良性增生性小管（阳性）的鉴别。（2）GFAP在乳腺病变中作为MEC的标记物的缺点是敏感性和特异性均较低，因为在正常乳腺组织中只有5-20%的MEC表达GFAP；导管上皮增生症中也只有20-30%的MEC有GFAP表达；在纤维腺瘤、叶状肿瘤和导管腺瘤中有表达GFAP的MEC在25-95%之间；在腺病中敏感性较高，有50-95%的MEC表达GFAP。GFAP也可表达于乳腺良性病变的EC和间质中的肌纤维母细胞，在乳腺良性病变中，10-25%的EC表达GFAP[23]。 总之，以上标记物在识别乳腺MEC时各有优缺点，每种抗体也都可以和某些非MEC出现阳性反应（见表1）。这些标记物中，敏感性较高的是actin/MSA、α-SMA、calponin、SMMHC、CD10、P63、CK14 /17；敏感性较低的是GFAP。特异性较高的是P63、SMMHC和calponin，其次是actin/MSA、α-SMA，最低的是S100、GFAP。敏感性和特异性均较高的标记物是P63，敏感性和特异性均较低的是S100及GFAP。在日常的病理诊断工作中，我们应该根据不同的病变选用合适的标记物，或同时采用二种或多种标记物搭配，才能更好的标记乳腺MEC。例如：MEC和EC鉴别时选用actin/MSA、α-SMA、calponin、SMMHC、CD10和P63较好，MEC和癌细胞鉴别时选用calponin和SMMHC较好。MEC与血管平滑肌细胞和间质肌纤维母细胞鉴别时选用P63、CK14/17、S100、S100-β较好。用双标记法能更好的标记MEC，例如：采用P63和actin/MSA、α-SMA、calponin或SMMHC共同标记同一细胞，如果该细胞双标记均为阳性即为MEC。相信随着科学技术的不断发展，能不断发现更敏感、更特异的MEC的标记物和/或标记方法，为乳腺良恶性病变的鉴别诊断提供更有力的手段。

上面都是病理切片免疫组化染色的结果。结果显示组织中的上皮细胞阴性（ck-),淋巴细胞阳性（LCA+).这些染色只表明这些细胞的来源是淋巴，但不显示良恶性。所以正常的淋巴细胞浸润（喉咙里是有的）还是淋巴瘤都可以有这些表现，不能够通过这个区分的。

在确诊乳腺癌的检查中，对穿刺活检和手术活检取得的组织，都要做常规病理检查。免疫组化是对取下的人体组织做进一步的处理，进行特殊的染色，这对于明确是不是癌症、是什么类型的乳腺癌有很大的帮助。如果常规病理尚不能确定肿块的性质，则需要进行免疫组化染色，以进一步明确疾病的性质。

免疫组化是利用抗原抗体结合的原理的一种检测方法，常用于病理检查，帮助明确肿瘤的来源，鉴别肿瘤的类型等。

1、免疫组化是活检的一部分。活检确定具体分型比较困难，借助免疫组化染色可以极大提高准确率。2、应用免疫学基本原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及定量的研究。3、进一步的对病情作出准确的诊断。4、根据检查结果针对性治疗。扩展资料免疫组织化学的临床应用：1、恶性肿瘤的诊断与鉴别诊断。2、确定转移性恶性肿瘤的原发部位。3、对某类肿瘤进行进一步的病理分型。4、软组织肿瘤的治疗一般需根据正确的组织学分类，因其种类多、组织形态相像，有时难以区分其组织来源，应用多种标志进行免疫组化研究对软组织肿瘤的诊断是不可缺少的。5、发现微小转移灶，有助于临床治疗方案的确定，包括手术范围的确定。6、为临床提供治疗方案的选择。参考资料：百度百科-免疫组化

免疫组化是化学显色 不是发光免疫荧光是通过抗体上标记的荧光基团发光

Ki67>20%是什么

非特异染色，或者因核定位蛋白在胞质中的表达修饰阶段。

希望你的问题更加详细；因为和不同类型的肿瘤细胞也有很大的关系。总体来说：Ki-67(+,<5%) ，表示肿瘤细胞的增生程度不是非常高；Syn(-)，提示不是神经内分泌或者神经元来源的成分；其它的，就要看是什么类型的组织细胞了希望对你有用

免疫组化是利用抗原与抗体间的特异结合原理和特殊的标记技术，对组织和细胞内的特定抗原、抗体进行定位、定性、定量的一们技术。我们都是先进行免疫组化，在DAB染色后进行HE染色。既能看到免疫组化的结果，又能看到细胞的形态，CD34+免疫组化染色后是棕色的颗粒，效果很好。 1）做免疫组化的片子最好不要同时做HE染色，因为那样会掩盖阳性着色的结果；而且用苏木素复染细胞核也是淡染，若要在免疫组化的片子上观察形态学的改变，除非有非常典型的表现，一般是有很大的难度的。 2）你是培养的细胞做免疫组化吗？如果是的话，那就每个样本只有一张片子吧？唯一的办法是进行免疫双染，同时做CD34和AFP（甲胎蛋白）。我觉得后者阳性便可以或多或少的获得向肝细胞分化的证据。 3）用HE染色来识别造血干细胞向肝细胞分化，也就是说要看到肝细胞的典型形态学改变后才可以下结论。问题是：早期的肝细胞仅凭形细胞态学观察并不能很容易的被识别。病理大夫看组织切片，重要的是看其组织学结构，对肝细胞也是这样。如果单拿出来一个细胞，还是培养的细胞，染色后真的不容易区分。所以我觉得你设计的用HE染色来确定早期细胞向哪个方向分化不是很有说服力。 4）如果是切片，也就是说每个样本可以有多张切片，那可以在连续切片上分别染CD34和AFP，拍照时选择相同视野，也有一定说服力。但是还是不如双染法更可靠。 5）用双染最大的问题在于：这两者都表达在胞浆中，染色容易相互覆盖。所以在双染的方法选择上你还要再考虑一下，可不可以用免疫荧光双染？这样也很有说服力的

免疫组化DAB染色，结果应该是棕黄色。 和染色时间有关系,一般应该是细胞核有棕黄色颗粒者为阳性细胞.楼主可以注意以下操作:1.标本进行PBS 清洗时，以5 分钟清洗3 次为标准。2. PBS 清洗后，为了各种反应的有效进行，请尽量除去PBS 溶液后再进行下一步反应3. 在载玻片上的样本上加上实验用反应液后，请盖上盖玻片或保鲜膜，或在湿盒中进行，这样可以使反应液均匀分布于样本整体，又可以防止反应液干燥造成实验失败。4. TdT 酶反应液即用即配，短暂于冰上保存。不宜长期保存，长期保存会导酶活性的失活。5.快速进行脱水操作!

免疫染色(immunol staining)包括免疫荧光(immunol fluorescence)、免疫组化(immunol histochemistry)，免疫组化又称免疫细胞化学(immunol cytochemistry)等

免疫组化染色影响因素影响免疫组化染色质量的因素有很多，在实验中应注意组织的取材和固定，选择质量好的商品化抗体，恰当地选择和使用封闭和抗原修复手段，严格的技术操作和对照等。1。假阴性反应可发生在：1) 组织内待测抗原已被分解破坏，或抗原含量过低；2) 抗原被遮盖，多由于醛类固定剂的使用，使组织中的大分子蛋白借醛键形成交联而遮盖待检抗原；3) 抗体质量不佳或稀释度不当；4) 技术操作失误等。2．假阳性反应可发生在：1) 抗体与非待检抗原发生交叉反应，在使用多克隆抗体时易出现；2) 组织对抗体的非特异性吸附，特别是在有大片组织坏死或组织中有较多富于蛋白的液体时容易发生；3) 内源性过氧化酶的作用，在脾脏、骨髓及一些炎性病变组织的染色中易出现；内源性碱性磷酸酶的作用，特别是肠黏膜上皮和肾近曲小管的刷状缘有高浓度的碱性磷酸酶，若处理不彻底，易出现假阳性结果；4) 判断失误，将肿瘤组织中残留的正常组织的免疫组织化学阳性信号误认为是肿瘤的染色反应；5) 当肿瘤浸润破坏正常组织时，使被破坏的正常细胞胞浆内的可溶性蛋白释放，后者被肿瘤细胞非特异吸附或吞噬，使瘤细胞出现该种抗原的阳性反应；⑥外源性和内源性色素的干扰。

1.缩短一抗/二抗孵育时间、稀释抗体来控制。这是最重要的一条；2.一抗用多克隆抗体易出现非特异性着色，建议用单克隆抗体看看；3.内源性过氧化物酶和生物素在肝脏、肾脏等组织含量很高（含血细胞多的组织），需要通过延长灭活时间和增加灭活剂浓度来降低背景染色；4.非特异性组分与抗体结合，这需要通过延长二抗来源的动物免疫血清封闭时间和适当增加浓度来加强封闭效果5.缩短DAB孵育时间或降低DAB浓度/过氧化氢浓度等；6.适当增加PBS冲洗次数和浸洗时间，在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤为重要；7.防止标本染色过程中出现干片，这容易增强非特异性着色多次实验的总结，望采纳

免疫组化非特异性染色建议楼主还是查询文献吧，一般文献中讲解比较详细的哈

软组织肿瘤类型很多，由于普通病理切片还不能确定是哪种类型的肿瘤，因此通过一些特异性表达某种肿瘤的抗体进行标记，有望获得明确的病理诊断，所以要借助于免疫组化及特殊染色。经过上述技术，明确诊断后才能分析是否良恶性，所以还得等待结果。如有结果，我可以进一步帮你进行分析。祝好运！

其为制成病理切片，将病变组织包埋在石蜡块里，用切片机切成薄片，进行染色。病理切片为取一定大小的病变组织，用病理组织学方法制成病理切片，将病变组织包埋在石蜡块里，用切片机切成薄片，再用苏木精－伊红（H-E）染色，用显微镜进一步检查病变。病变的发生发展过程，最后作出病理诊断。制作时将部分有病变的组织或脏器经过各种化学品和埋藏法的处理，使之固定硬化，在切片机上切成薄片，粘附在玻片上，染以各种颜色，供在显微镜下检查，以观察病理变化，作出病理诊断，为临床诊断和治疗提供帮助。扩展资料：病理切片的相关内容：1、根据各器官的组织结构，决定其切面的走向。纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键，如长管状器官以横切为好。2、要准确地按解剖部位取材，病理标本取材按照各病变部位、性质的不同，根据要求规范化取材。3、切取组织块用的刀剪要锋利，切割时不可来回锉动。夹取组织时切勿过紧，以免因挤压而使组织、细胞变形。参考资料来源：百度百科-病理切片

良好的免疫组化染色切片是正确判断染色结果的基础和前提。由于免疫组化染色过程中存在很多步骤或环节，每一个步骤或环节都可能影响到染色的最终结果，因此，要做好一张高质量的免疫组化切片并不是一件非常容易的事。需要病理技术员和病理医生密切配合、相互协调、共同努力才能保证做出合格的免疫组化切片。虽然免疫组化染色可以存在各种各样的问题，但从染色的结果看，一般可分为两类：无色片（即无阳性信号）和"杂音"染色片（有阳性信号）。 　　一、 无色片 　　染色结束后，切片中见不到任何阳性信号。这是常规工作中比较常见的现象，出现这种现象，有两种可能：1、真阴性结果：整个染色过程没有出现问题，组织或细胞确实不表达与抗体相关的抗原。2、假阴性结果：即此阴性结果不是真实的反映。假阴性结果又可分为两种情况：（1）、切片中根本就不包含所预期检查的组织或细胞。出现这种情况，要麽是病理医生选择错了切片或抗体选错了，要麽是技术员选错了蜡块。获得正确的切片进行染色是获得正确结果的前提。由此表明：制作出合格的免疫组化切片不仅仅是技术员的事，病理医生也起着不可缺少的作用。（2）、染色过程中的某一或某些环节出了问题。比如，组织未进行抗原修复，有的组织必须经过抗原修复才能检测抗原表达；或选用了只能用于冰冻组织而不能用于石蜡包埋组织的抗体；或一抗失效，虽然抗体失效在理论上是一个逐渐的过程，但偶尔也遇到突然失效的情况，抗体长期不用和/或已超过有效期是主要的原因。也可见于染色过程中漏掉了某一环节，如忘记加二抗或三抗，或用了两次二抗而缺少了三抗，或配制DAB时少了过氧化氢。为了避免这种简单的错误，有一种简单的方法：在三抗孵育结束时，将切片上的三抗甩在一张白纸上，在将配制好的DAB滴一滴在白纸的三抗上，观察是否出现棕色。如果出现了，证明三抗和DAB的配制过程没有错误。如果这种DAB再滴到切片上没有出现任何阳性信号，问题一定是出在三抗以前。如果纸上不出现棕色反应，问题肯定在三抗DAB或DAB的配制过程。这种简单方法能迅速的帮助我们查找出现问题可能的原因。 　　解决阴性染色的问题非常简单，就是设立"阳性对照".如果阳性对照有了表达，说明染色的全过程和所有试剂都没有问题。如果此时测试片仍为阴性，便是真实的阴性，说明组织或细胞没有相应的抗原表达。反之，如果阳性对照没有着色，表明染色过程中某个或某些步骤出了问题或试剂出了问题。应一一寻找原因。阳性对照包括两种，一种称为"自身对照"或"内部对照"，这是指在测试的切片中本身就存在已知的抗原，如正常淋巴结中存在T和B细胞抗原，CD20或CD3都应该有表达。自身对照是一种比较理想的对照，对照和测试组织或细胞都在同一张切片中，都处于相同的试验条件下，结果更可靠也更具有可比性。在选择自身对照片时选择既有病变组织同时又有正常组织的部分，这样有利于对比。另一种称为"外部对照"，有时在测试的切片中不存在已知的抗原，如在胃的标本中怀疑是恶性黑色素瘤，需要用HMB45或Mart-1来检测，在正常的胃组织中本身不存在相关的抗原，如果病变出现阳性反应结果，尚能提示是恶黑，但是如果出现阴性结果，就无法确定是本身组织中不含黑色素瘤抗原，还是技术问题。因此，应另外设立一个已知的阳性对照。这种在测试组织之外的阳性对照称为"外部对照".在实际工作中需要设立外部对照的情况很多，如果每一种抗体都要选不同的阳性对照，工作量会很大。为了解决这个问题，目前国内外有单位将多种不同组织集成在一起，制成多组织切片、"腊肠""春卷"切片、组织芯片等，其连续切片储备待用，需要时取出一张便可作为阳性对照。另外，比较简单的方法，是采用阑尾作为阳性对照，因为与人体其它组织器官比较阑尾包含的组织种类较多，如有上皮、淋巴组织、平滑肌、间质、神经、血管、间皮等。一张阑尾切片可以检测大多数常用的抗体。 　　设立阳性对照是病理医生的任务或责任，而不是技术员的责任。病理医生观察了HE切片，了解切片中是否有自身对照，如果没有，就应告诉技术员采用阳性对照。因此，病理医生在免疫组化中的作用是不可忽视的。 　　抗体未覆盖上测试组织：当多块散开的小组织染色时，可能漏掉某块组织染色。 　　二、“杂音”染色片 　　免疫组化除正常的真实的阳性信号外常常会遇到不正常的背景着色，这些非正常的着色称为"杂音"染色。"杂音"染色种类繁多，产生的原因也多种多样，为了便于说明，笔者将其归纳为下面几种。 　　1、 全片着色 　　全片着色是指整个切片全都染上了颜色，着色的强度可深可浅，总之，分不清那些组织是阳性那些组织是阴性。出现这种现象的原因有： 　　（1）、抗体浓度过高：一抗浓度过高是常见的原因之一。解决办法是，每次使用新抗体前应当对其工作浓度进行测试，使每一抗体个体化，找到适合自己实验室的理想工作浓度，既使是即用型的抗体也应如此，不能只简单的按说明书进行染色。 　　（2）、抗体孵育时间过长或温度较高：解决办法是，严格执行操作规程，随身佩带报时表或报时钟，及时提醒，避免因遗忘而造成时间延长。现在流行的二步法（Polymer）敏感性很高，要求一抗孵育的时间不是传统的1小时，而是30分钟，因此，要根据染色结果进行调整。 　　（3）、DAB变质和显色时间太长：DAB现用现配，如有沉渣应进行过滤后再用。配制好的DAB不应存放时间太长，因为在没有酶的情况下，过氧化氢也会游离出氧原子与DAB产生反应而降低DAB的效力，未用完的DAB存放在冰箱里几天后再用这种似乎节约的办法是不可取的。DAB的显色在显微镜下监控，达到理想的染色程度时立即终止反应。不过当染色片太多时或用染色机时，这样做似乎不现实，但至少应对一些新的或少用的抗体显色时进行监控，避免显色时间过长。 　　（4）、组织变干：修复液溢出后未及时补充液体、染色切片太多、动作太慢、忘记滴液、滴液流失等都是造成组织变干的原因。解决的办法是操作要认真仔细，采用DAKO笔或PAP Pen在组织周围画圈，可以有效的避免液体流失，也能提高操作速度。 　　（5）、切片在缓冲液或修复液中浸泡时间太长（大于24小时）：原因上不清楚，但现象存在。有的实验室喜欢前一天将切片脱蜡至修复，第二天加抗体进行免疫组化染色，如果将装有切片和修复液的容器放在4？C冰箱过夜，对结果无明显影响，如果放在室温，特别是炎热的夏天，会出现背景着色，因此，不可存放时间太长。（6）、一抗变质、质量差的多克隆抗体：注意抗体的有效期，过期的抗体要麽不显色要麽背景着色。用新买的抗体时设立阳性对照和用使用过的抗体作比较。

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。免疫组化和特殊染色是病理检查中常用的检测方法，免疫组化全称是免疫组织化学染色，病理检查中最常用的是HE染色，使用非HE染色的检测方法都可以称为特殊染色。都是病理检查中对送检组织进行的处理方法，组织经过一系列的处理之后才能在显微镜下观察其有无病变，病变是什么等。扩展资料：免疫组化实验中常用的抗体为单克隆抗体和多克隆抗体，单克隆抗体是一个B淋巴细胞克隆分泌的抗体，应用细胞融合杂交瘤技术免疫动物制备。多克隆抗体是将纯化后的抗原直接免疫动物后，从动物血中所获得的免疫血清，是多个B淋巴细胞克隆所产生的抗体混合物。参考资料来源：百度百科-免疫组化

免疫组化和特殊染色是做病理的，两个必须具备的步骤，因此要一个个做，不要急，不要慌

石蜡切片HE染色和免疫组化染色的区别不需要再做HE染色免疫组化就能显示不同颜色的区域石蜡切片保存方法最好是贴到载玻片上37度烘干后放到切片盒里保存

免疫组化的面积。是借助于计算机图像分析系统，使用平均阳性感染面积百分比(APSAP)法分析免疫组化切片结果。

免疫组化原理 免疫组化染色是用一抗与被检测组织中目的蛋白抗原结合，然后用HRP等标记的二抗与一抗进行结合，最后通过与DAB显色剂反应，进而确认所要检测蛋白抗原的定位、半定量等目的。 免疫组化更多的意义在于查看目的蛋白的定位。定量一般用western来实现。 免疫组化染色和HE染色的不同之处可能是HE染色比较粗略地辨认不同细胞形态学改变；而后者能够针对特异性细胞标志物来检测特异性细胞的改变（数量）、也可检测细胞内细胞因子的转位，组织中一些特异性蛋白的表达的量改变（通过图像分析系统分析颜色深浅、分布的面积等综合分析）。 通俗的讲，HE仅仅是看大体病理改变，比如组织坏死，比如炎性渗出。免疫组化，看你的目的蛋白的表达情况。 免疫组化和****HE****染色的对比 DAB和HE一样也是一种染色剂，HE染色相对简单，能分辨出细胞中的嗜酸嗜碱性物质；DAB染色全称应该叫做免疫组化DAB染色，经过一系列复杂的生化反应后，DAB(二氨基联苯胺)染色剂能将辣根过氧化物酶染成棕色。 常用的免疫组化染色方法: 组化用HRP的话，信号不够强。通常用生物素标记HRP来增强信号。 1、 ABC法（卵白素-生物素-过氧化物酶复合物法） ABC法是利用卵白素与生物素特有的高度亲和力特性，与生物素化二抗结合，形成抗原＋特异性抗体＋生物素化二抗＋卵白素＋生物素＋HRP复合物，最后DAB显色。 复合物配制：先将生物素与酶结合，形成生物素化HRP，以生物素化HRP与卵白素按一定比例混合，形成卵白素-生物素-过氧化物酶复合物。 2、 SP法（抗生物素蛋白链酶素-过氧化物酶复合物） 本身没有连接生物素，但有两个生物素亲和力极高的结合位点，可以与二抗上的生物素结合，敏感性高，复合物不需要使用前混合，更为简便。 3、 PAP法 4、 直接法 样本制备 免疫组化结果分析 免疫组化结果的判断原则： 1 、必须设阳性对照和阴性对照。 2 、 抗原表达必须在特定部位。 3 、 阴性结果不能视为抗原不表达。 免疫组化染色实验组与对照组结果分析表 从表可以看出只有6、7实验结果有意义。1-5均因对照组的结果已否定Ab的特异性或IHC技术操作存在错误等而使实验结果失去意义，必须重复实验或换用Ab。 染色失败的几种情况及原因: 1、 所染的全部切片均为阴性结果，包括阳性对照在内。 2、 所有切片均呈阳性反应。 3、 所有切片背景过深。 4、 阳性对照染色良好，检测的阳性标本呈阴性反应。 所有切片呈阳性反应，其原因: 1、 切片在染色过程中抗体过浓，或干片了。 2、 缓冲液配置中未加氯化纳和PH值不准确， 洗涤不彻底。 3、 使用已变色的呈色底物溶液，或呈色反 应时间过长。 4、 抗体温育的时间过长。 5、 H 2 O 2 浓度过高，呈色速度过快且粘附剂太厚。 所有切片背景过深，其原因: 1、 内源性过氧化酶没有完全阻断。 2、 切片或涂片过厚。 3、 漂洗不够。 4、 底物呈色反应过久。 5、 蛋白质封闭不够或所用血清溶血。 6 、使用全血清抗体稀释不够。 阳性对照染色良好，检测的阳性标本呈阴性反应。 最常见的原因:标本固定和处理不当。 注意事项： 1、 苏木素复染时间需要摸索，尤其要考虑阳性染色的位置。 2、 切片脱蜡和水化要充分；加反应液时要覆盖组织充分；每次加液前甩干洗涤液，但又防止干片。 3、 以下原因可能导致片子着色不均匀： ①脱蜡不充分。可以60℃烤20min，立即放入新鲜的二甲苯中。 ②水化不全。应经常配制新鲜的梯度乙醇。 ③抗体没混匀。用移液器充分混匀一抗/二抗等试剂。④抗体孵育时，切片放倾斜。 ⑤抗体孵育后PBS冲洗不充分。 ⑥制片厚薄不均匀等问题。 ⑦染片盒不平，切片倾斜。 4、 一抗的清洗: 1、单独冲洗，防止交叉反应造成污染。 2、温柔冲洗，防止切片的脱落，推荐用浸洗方式。 3、冲洗的时间要足够，才能彻底洗去 结合的物质。 5、 PBS的PH和离子强度的使用： 1、建议PH在7.4-7.6浓度是0.01 M。 2、中性及弱硷性条件（PH7-8）有利 于免疫复合物的形成，而酸性条件则有利于分解；低离子强度有利于免疫复合物的形成，而高离子强度则有利 于分解。 6、 拍照： 1、有条件的话应该立即拍照，若不能及时拍照，也要封好片和用指甲油封固，保持避光和湿度。

没有，seer数据库主要是临床特征的数据库，如果要找免疫组化及基因检测结果，上TCGA或者GEO数据库

PR就是孕激素，你的结果为阳性，表示组织里面含有孕激素。 免疫组化结果主要是帮助病理诊断及指导临床治疗，你的PR为阳性，说明有孕激素在组织中。激素受体（ER）和孕激素受体（PR） 人类最先发现乳腺癌细胞和激素的关系始于1896年。Bentson观察到乳腺癌患者切除卵巢后可使乳腺癌细胞的生长受到抑制。1967年Jensen发现人类乳腺癌中含有ER。从此开始了真正意义上的乳腺癌内分泌治疗的研究。女性正常乳腺的细胞上存在ER和PR，雌激素和孕激素通过ER和PR对细胞功能进行调节。当细胞恶变时，肿瘤细胞可以部分地或全部保留正常的受体系统，其功能与正常细胞相似。这种肿瘤细胞的生长仍然依赖原来的激素环境调节，称为激素依赖性肿瘤，临床上称为ER阳性乳腺癌。有些细胞在癌变过程中，其受体系统保留很少或完全丧失，不能再作为激素的靶细胞，其生长不再受激素的控制与调节，临床上表现为ER阴性乳腺癌。Jensen发现ER后，很快又发现PR，并证明PR的合成与雌激素和ER复合物在核内发生的变化过程有关，PR的形成直接受ER的控制和调节，故PR阳性的乳腺癌，ER大多为阳性。 临床上可以通过对雌激素受体（ER）和孕激素受体（PR）的检测，得出肿瘤细胞内激素受体含量的水平，从而提示乳腺癌的预后信息和指导内分泌治疗。据报道乳腺癌ER、PR检测的阳性率分别为40％～60％、30％左右。许多文献均已证实，ER、PR变化与乳腺癌病人预后密切相关，亦与其他公认的预后因素，如肿瘤分级、倍体性及分期有关。高分化肿瘤或临床分期较低的肿瘤ER、PR更可能阳性，受体阳性肿瘤细胞的明显减少与细胞增殖分级增高、c－erbB－2癌基因扩增增加及EGFR表达增加有关。免疫组化抗受体检测可预测乳腺癌对激素治疗的反应性。无ER或PR表达的肿瘤对激素治疗通常反应性差，而ER及PR阳性肿瘤则对激素治疗反应性高。 1974年美国Bethesde国际会议，综合世界各国400多例各种方式的内分泌治疗报道，表明事先未经激素受体测定的乳腺癌患者，应用内分泌治疗有效率只有30％；而经ER测定阳性者有效率达55％～60％，受体阴性者有效率5％～8％。TAM治疗无效的原因与ER的异常结构有关。其后多年病例不断积累，报道的有效率基本在这一水平。1998年美国临床肿瘤年会（ASCO）国际权威协作临床研究报道 37 000例乳腺癌患者的结果表明：①乳腺癌术后辅助三苯氧胺（TAM）治疗可以明显降低复发率、死亡率；②TAM对绝经后患者有效，绝经前患者也有一定疗效；③ER阳性患者用TAM效果最好，ER不明的患者也有效；④辅助化疗后加用TAM，能进一步提高疗效；⑤延长服药时间能提高疗效；⑥服用TAM明显降低对测乳腺癌发生率；⑦长期服用TAM会增加患子宫内膜癌的风险。 乳腺中存在ER和PR,当乳腺上皮细胞发生癌变时,ER、PR会部分或全部缺失。如果乳腺肿瘤组织仍表达这两类受体,表明该肿瘤细胞仍受内分泌调节,仍可采取内分泌治疗。据文献报道,乳腺癌ER阳性率约为50%~80%,PR阳性率约为50%。两种受体对于指导治疗、疗效预测及预后评价有很大价值。ER和(或)PR阳性患者较ER和(或)PR阴性患者有较好的预后,前者的5年及10年生存率均高于后者,且前者接受内分泌治疗较后者有更好的疗效。该回答已被医生认证对病情仍有疑问？在此免费向医生提问，3分钟内为您解答！向医生提问网友回答拇指医生提醒您：网友回答仅供参考声明此答案复杂（处处百度，仅供参考）激素受体（ER）和孕激素受体（PR） 人类最先发现乳腺癌细胞和激素的关系始于1896年。Bentson观察到乳腺癌患者切除卵巢后可使乳腺癌细胞的生长受到抑制。1967年Jensen发现人类乳腺癌中含有ER。从此开始了真正意义上的乳腺癌内分泌治疗的研究。女性正常乳腺的细胞上存在ER和PR，雌激素和孕激素通过ER和PR对细胞功能进行调节。当细胞恶变时，肿瘤细胞可以部分地或全部保留正常的受体系统，其功能与正常细胞相似。这种肿瘤细胞的生长仍然依赖原来的激素环境调节，称为激素依赖性肿瘤，临床上称为ER阳性乳腺癌。有些细胞在癌变过程中，其受体系统保留很少或完全丧失，不能再作为激素的靶细胞，其生长不再受激素的控制与调节，临床上表现为ER阴性乳腺癌。Jensen发现ER后，很快又发现PR，并证明PR的合成与雌激素和ER复合物在核内发生的变化过程有关，PR的形成直接受ER的控制和调节，故PR阳性的乳腺癌，ER大多为阳性。 临床上可以通过对雌激素受体（ER）和孕激素受体（PR）的检测，得出肿瘤细胞内激素受体含量的水平，从而提示乳腺癌的预后信息和指导内分泌治疗。据报道乳腺癌ER、PR检测的阳性率分别为40％～60％、30％左右。许多文献均已证实，ER、PR变化与乳腺癌病人预后密切相关，亦与其他公认的预后因素，如肿瘤分级、倍体性及分期有关。高分化肿瘤或临床分期较低的肿瘤ER、PR更可能阳性，受体阳性肿瘤细胞的明显减少与细胞增殖分级增高、c－erbB－2癌基因扩增增加及EGFR表达增加有关。免疫组化抗受体检测可预测乳腺癌对激素治疗的反应性。无ER或PR表达的肿瘤对激素治疗通常反应性差，而ER及PR阳性肿瘤则对激素治疗反应性高。 1974年美国Bethesde国际会议，综合世界各国400多例各种方式的内分泌治疗报道，表明事先未经激素受体测定的乳腺癌患者，应用内分泌治疗有效率只有30％；而经ER测定阳性者有效率达55％～60％，受体阴性者有效率5％～8％。TAM治疗无效的原因与ER的异常结构有关。其后多年病例不断积累，报道的有效率基本在这一水平。1998年美国临床肿瘤年会（ASCO）国际权威协作临床研究报道 37 000例乳腺癌患者的结果表明：①乳腺癌术后辅助三苯氧胺（TAM）治疗可以明显降低复发率、死亡率；②TAM对绝经后患者有效，绝经前患者也有一定疗效；③ER阳性患者用TAM效果最好，ER不明的患者也有效；④辅助化疗后加用TAM，能进一步提高疗效；⑤延长服药时间能提高疗效；⑥服用TAM明显降低对测乳腺癌发生率；⑦长期服用TAM会增加患子宫内膜癌的风险。 乳腺中存在ER和PR,当乳腺上皮细胞发生癌变时,ER、PR会部分或全部缺失。如果乳腺肿瘤组织仍表达这两类受体,表明该肿瘤细胞仍受内分泌调节,仍可采取内分泌治疗。据文献报道,乳腺癌ER阳性率约为50%~80%,PR阳性率约为50%。两种受体对于指导治疗、疗效预测及预后评价有很大价值。ER和(或)PR阳性患者较ER和(或)PR阴性患者有较好的预后,前者的5年及10年生存率均高于后者,且前者接受内分泌治疗较后者有更好的疗效。

免疫组化利用抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性。先将组织或细胞中的某种化学物质提取出来，以此作为抗原或半抗原，通过免疫动物后获得特异性的抗体，再以此抗体去探测组织或细胞中的同类的抗原物质。所以免疫组化在组织定位和定性上比较准确，但是在定量上不够准确。western blot也是利用抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性。经过聚丙烯酰胺凝胶电泳分离的蛋白质样品，转移到固相载体上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应的抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体起反应。western blot因为有内参标定，所以在定量上要更加准确。但是在组织定位上不如免疫组化

MLH1(+)、MSH2(+)PMS2(+)、MSH6(+)，即微卫星稳定型大肠癌，提示适合于含氟尿嘧啶类药物的化疗方案，并且分化差是高危因素之一。免疫组化应用免疫学基本原理——抗原抗体反应，即抗原与抗体特异性结合的原理，通过化学反应使标记抗体的显色剂（荧光素、酶、金属离子、同位素）显色来确定组织细胞内抗原（多肽和蛋白质），对其进行定位、定性及相对定量的研究，称为免疫组织化学技术或免疫细胞化学技术。免疫染色包括免疫荧光、免疫组化，免疫组化又称免疫细胞化学等。扩展资料：免疫组织化学的临床应用主要包括以下几方面：1、恶性肿瘤的诊断与鉴别诊断。2、确定转移性恶性肿瘤的原发部位。3、对某类肿瘤进行进一步的病理分型。4、软组织肿瘤的治疗一般需根据正确的组织学分类，因其种类多、组织形态相像，有时难以区分其组织来源，应用多种标志进行免疫组化研究对软组织肿瘤的诊断是不可缺少的。5、发现微小转移灶，有助于临床治疗方案的确定，包括手术范围的确定。6、为临床提供治疗方案的选择。参考资料来源：百度百科-免疫染色参考资料来源：百度百科-免疫组化

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“三阴乳腺癌”特指雌激素受体（ER）、孕激素受体（PR）及人表皮生长因子受体2（HER-2）均阴性的乳腺癌患者。按分子分型，乳腺癌分为：luminal型、HER-2（＋）型和Basal-like型。Basal-like型分子表达为ER（－）/PR（－）/HER-2（－），相当于三阴乳腺癌，特征为基底上皮分子标志物高表达（CK5/6或17，EGFR）以及ER或ER相关基因及HER-2或HER-2相关基因低表达。对基底细胞样癌目前没有公认的定义，但对基底细胞样癌基因表达的定义有如下几种：①ER（－）/HER2（－），CK5/6（＋）和/或EGFR（＋）。②CK5/6（＋），caveolin1（＋），CAIX（＋），p63（＋）或CD117+。③CK5/6（＋）和/或CK14（＋）。④CK5/14（＋）。 本型乳腺癌5年生存率不到15%，多见于绝经前年轻患者，内脏转移、脑转移几率较高，病理组织学分级较差，多为3级，细胞增殖比例较高，且多伴p53突变，c-kit、p53、EGFR表达多为阳性，基底细胞标志物CK5/6、CK17也多为阳性。肿瘤侵袭性强，易发生局部复发及远处转移，与基底细胞样乳腺癌和BRCA1基因突变相关性乳腺癌有较多相似特征。三阴乳腺癌的预后与肿瘤大小和淋巴结状况关系不大，复发迅速，1-3年是复发高峰，5年内是死亡高峰，脑转移发生率高，迅速出现远处转移而导致死亡。 “三阴乳腺癌”内分泌治疗和曲妥珠单抗靶向治疗无效，治疗上依靠化疗为主。与其他类型乳腺癌相比，三阴性乳腺癌对化疗、放疗敏感性较高，但如果只是常规的标准治疗，其预后依然很差，无复发生存和总生存较低。目前还没有针对三阴性乳腺癌的治疗指南，其治疗一般按预后差乳腺癌治疗常规进行，术后辅助化疗选择含蒽环类紫杉类方案。新辅助化疗中在接受含紫杉类和蒽环类的新辅助化疗后，可获得较高的病理完全缓解率。铂类药物用于新辅助化疗正在研究中。 转移性三阴乳腺癌病情发展迅速，姑息性化疗的研究有以下几方面： 微管稳定剂Paclitaxel、Docetaxel、nab-paclitaxel、ixabepilone；卡铂/顺铂；抗血管生成Bevacizumab、Sunitinib；EGFR抑制剂Cetuximab、Erlotinib等。在新药研究中，依沙匹隆被证实与卡培他滨联合应用于对蒽环类及紫杉类耐药的晚期乳腺癌及三阴乳腺癌较单用卡培他滨疗效为好。 “三阴乳腺癌”内分泌治疗和曲妥珠单抗靶向治疗无效，但部分三阴乳腺癌高表达EGFR、c-Kit、CK5/6、P-cadherin，p53，这类患者有望通过针对相关的靶向治疗而获益。 目前国际上正在进行EGFR的单克隆抗体西妥昔单抗，EGFR的酪氨酸激酶抑制剂吉非替尼、埃罗替尼在三阴乳腺癌治疗中的作用的研究。在许多存在BRCA1缺失或变异的三阴乳腺癌患者中，由于BRCA1在DNA修复mRNA转录及细胞周期校对中起重要作用，BRCA1基因缺失者发展成为乳腺癌者风险高达82%，BRCA1基因突变者发展成为乳腺癌的风险为5%，对此的相关研究表明存在BRCA1缺失或变异的患者对破坏DNA化学结构的药物（如烷化剂、铂类、丝裂霉素）有效，而对作用于微管蛋白合成的药物（如紫杉醇、长春碱类）效果较差。三阴乳腺癌患者经过保乳手术及放疗后并没有出现比非三阴乳腺癌患者更高的局部复发率，即经放疗后三阴乳腺癌的局部复发率与非三阴乳腺癌相接近。三阴乳腺癌理论上对DNA毒性药物有效，也因此也对放疗有效。

SyN是神经内分泌指标。说明是神经内分泌癌。CEA可能是乳腺癌一种高分化肿瘤标志,并与肿瘤的浸润转移潜能有一定的关系.化疗效果可以,建议中医治疗,免受化疗之苦.

NSE，中文译为神经特异性烯醇化酶，Syn是突触素，CEA是癌胚抗原，KI67是增殖指数。这四个免疫组化的组合结果来看，可以推断肿瘤发生的部位是在肠道，CEA旨在与大肠癌进行鉴别。若为类癌CEA应为(-)，如果是符合神经内分泌肿瘤（类癌），那么NSE和Syn都必然是（+）。ki67显示增殖指数，较高的话一般提示恶性程度相对也较高。 肠道的类癌最常发生的部位在盲肠、阑尾等近端结肠的部位。通常情况下恶性程度不高，手术可治愈获得与常人一般的预后，而KI67较高者，或伴有肠道粘膜深层浸润及转移者，或病理学形态为非典型性者，提示肿瘤具有异形性，应诊断为非典型类癌，预后相对较差。

CK(-),（低分子量角蛋白）腺上皮阳性，而复层鳞状上皮阴性，主要用于腺癌诊断。Vimentin(+),（波形蛋白）间叶组织标志阳性。Syn(+)（突触素）神经性和上皮性神经内分泌肿瘤的特异性标志之一，用于标记神经内分泌肿瘤。NSE(+)（烯醇化酶）神经内分泌肿瘤阳性。CgA(-)（嗜铬素A）主要用于标记神经内分泌细胞及其来源的肿瘤阳性。CD56(+)（为神经细胞黏附分子）大多数神经外胚层来源细胞，常用于星型细胞瘤、神经母细胞瘤、神经内分泌肿瘤阳性。CD10(+)（急性淋巴母细胞型白血病抗原）主要表达于未成熟淋巴细胞，近几年来发现该抗原在造血系统外的某些肿瘤中有表达，胰腺实性假乳头状肿瘤阳性。β-catenin(+)（β-catenin信号通路）作为一种多功能的蛋白质，广泛存在于各种类型的细胞参与这些细胞的增殖、分化和凋亡等方面发挥了重要的调节作用。PR(+),（孕激素受体）-性激素作用--胞核--阳性率越高，乳腺癌中对内分泌治疗越有效，预后越好。Ki-67(<1%+) （细胞增殖标志）胞核--阳性率越高，肿瘤增殖越快，恶性程度越高。患者应该是胃或十二指肠神经内分泌癌。

Syn【 突触素】（+）提示肿瘤来源于神经组织。

免疫组化指标。免疫组织化学突触素(+)是指检查结果为阳性，Syn是免疫组织化学的一个指标，为突触素，代表神经内分泌分化的免疫组化指标，免疫组织化学利用抗原和抗体相结合的原理，可以判断机体组织是否携带抗原标记，具有指导治疗和判断预后的作用。

抗原反应。免疫组化ncr(-)是免疫组织化学的简称，它是应用免疫学的基本原理，也就是抗原抗体反应，即抗原和抗体能够特异性结合的原理，来确定组织细胞内的抗原（多肽、蛋白质）并对其进行定位、定性以及相对定量进行研究。因此，称之为免疫组织化学技术，简称免疫组化ncr(-)，是病理学检查的常用技术。基本原理就是利用人体内抗体和抗原之间具有高度特异性结合的原理。

一抗如果是鼠抗人的抗体，二抗应该是另一种动物抗鼠的抗体，而且以抗和二抗的动物种属原则上不应该相同。一般来说，一抗多用兔抗和鼠抗，而二抗多用羊抗。 单克隆抗体是指针对于抗原标志物上某一种抗原决定簇产生的单一种类的抗体，一般通过杂交瘤细胞技术制得；多克隆抗体是指针对抗原上多个抗原决定簇产生的抗体，一般将抗原免疫动物血清直接制得。对于一抗来说，现用单克隆抗体较多。 相对于一抗的特异性，二抗要求广谱抗体，最好能够一对多。现在购买的二抗多是二抗加亲和素生物素的复合物，与传统二抗有所不同。至于封闭液的问题，其实就是用与二抗相同种属动物的非免疫血清封闭阻断非特异性蛋白，可以视所作标本中蛋白的特异性做或不做。一般可以和二抗成套购买。

免疫组化利用抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性。先将组织或细胞中的某种化学物质提取出来，以此作为抗原或半抗原，通过免疫动物后获得特异性的抗体，再以此抗体去探测组织或细胞中的同类的抗原物质。 所以免疫组化在组织定位和定性上比较准确，但是在定量上不够准确。 western blot也是利用抗体和抗原之间的结合具有高度的特异性。经过聚丙烯酰胺凝胶电泳分离的蛋白质样品，转移到固相载体上，固相载体以非共价键形式吸附蛋白质，且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原，与对应的抗体起免疫反应，再与酶或同位素标记的第二抗体起反应。 western blot因为有内参标定，所以在定量上要更加准确。但是在组织定位上不如免疫组化